ЗАСТОСУВАННЯ БРОНХОАЛЬВЕОЛЯРНОГО ЛАВАЖУ ДЛЯ ДІАГНОСТИКИ ХВОРОБ НИЖНІХ ДИХАЛЬНИХ ШЛЯХІВ У КОНЕЙ

Рейтинг користувача: 0 / 5

Неактивна зіркаНеактивна зіркаНеактивна зіркаНеактивна зіркаНеактивна зірка
 

Bìol. Tvarin, 2017, Volume 19, Issue 1, pp. 7382                    http://dx.doi.org/10.15407/animbiol19.01.073

ЗАСТОСУВАННЯ БРОНХОАЛЬВЕОЛЯРНОГО ЛАВАЖУ ДЛЯ ДІАГНОСТИКИ ХВОРОБ НИЖНІХ ДИХАЛЬНИХ ШЛЯХІВ У КОНЕЙ

А. Нєдзвєдзь1, Г. Боровіч1, I. Максимович2, Л. Слівінська2, К. Куб’як1

maksym_vet@ukr.net, artur.niedzwiedz@up.wroc.pl

1Природничий університет,
Грюнвальдська площа 47, м. Вроцлав 50-366, Польща,

2Львівський національний університет ветеринарної медицини
та біотехнологій імені С.З.Ґжицького,
вул. Пекарська, 50, м. Львів, 79010, Україна

У статті подано результати дослідження бронхоальвеолярного лаважу (БАЛ) уконей за рецидивуючої обструкції дихальних шляхів (RАО), запальних захворювань нижніх дихальних шляхів (IAD), індукованої навантаженням легеневої кровотечі (EIPH).

Дослідження проводили на конях різного напрямку використання (спортивні, робочі, рекреаційні). Матеріалом для дослідження були 25 коней різних порід і статі, віком від 2-ох до 19років.

Показаннями для проведення БАЛ у коней були кашель, особливо під час фізичного навантаження, слизисто-гнійні виділення з носа, стійке тахіпное, задишка у спокої, гарячка, знижена роботоздатність та непереносимість фізичних навантажень, наявність великої кількості слизу, гнійного ексудату та крові, виявлених при ендоскопічному дослідженні нижніх дихальних шляхів.

БАЛ у коней виконували під візуальним контролем відеоендоскопа EC-530LP FUJION (технічні характеристики: діаметр дистального кінця 11,0 мм; діаметр інструментального каналу 3,2мм; робоча довжина 1690 мм; загальна довжина 1990 мм).

Діагностичним критерієм EIPH є наявність крові в нижніх дихальних шляхах, яку виявляють під час ендоскопічного дослідження у 75–95% хворих коней. Підтвердити діагноз на EIPH можна виявленням еритрофагів чи гемосидерофагів в пробах БАЛ, на долю яких може припадати більше, ніж 50 % від усіх макрофагів, присутніх у зразку.

БАЛ у коней за ІAD характеризується збільшенням загальної популяції клітин, абсолютної та відносної кількості нейтрофілів (15–20 %). За RAO в цитологічних препаратах, отриманих за допомогою БАЛ, виявляють змішану популяцію клітин, найбільшою кількісною групою з яких є нейтрофіли (15–85 % від усієї популяції клітин).

Бронхоальвеолярний лаваж є інформативним методом діагностики індукованої навантаженням легеневої кровотечі, запальних захворювань нижніх дихальних шляхів, рецидивуючої обструкції дихальних шляхів. Аналіз цитограми БАЛ дозволяє проводити диференціальну діагностику хвороб нижніх дихальних шляхів у коней.

Ключові слова: БРОНХОСКОПІЯ, КОНІ, БРОНХОАЛЬВЕОЛЯРНИЙ ЛАВАЖ, АСПІРАЦІЯ ТРАХЕЇ, ЦИТОГРАМА, РЕЦИДИВУЮЧА ОБСТРУКЦІЯ ДИХАЛЬНИХ ШЛЯХІВ

1. Art T., Kirschvink N., Smith N., Votion D., Lekeux P. Cardiorespiratory measurements and indices of oxidative stress in exercising COPD horses. Equine Vet. J. Suppl., 1999, vol. 30, pp. 83–87.

2. Bain F. T. Cytology of the respiratory tract. Vet. Clin. North Am. Equine Pract., 1997, vol. 13, pp. 477–486.

3. Birks E. K. EIPH: Postrace endoscopic evaluation of standardbreds and Thoroughbreds. Equine Vet. J. Suppl., 2002, vol. 34, pp. 375–378.

4. Chaffin M. K., Cohen N. D., Blodgett G. P., Syndergaard M. Evaluation of ultrasonographic screening methods for early detection of Rhodococcus equi pneumonia in foals. J. Equine Vet. Sci., 2012, vol. 32, pp. 20–21.

5. Chapman P. S., Green C., Main J. P., Taylor P. M., Cunningham F. M., Cook A. J., Marr C. M. Retrospective study of the relationships between age, inflammation and the isolation of bacteria from the lower respiratory tract of Thoroughbred horses. Vet. Rec., 2000, vol. 146, no. 4, pp. 91–95.

6. Christley R. M., Hodgson D. R., Rose R. J., Hodgson J. L., Wood J. L., Reid S. W. Coughing in thoroughbreds racehorse: risk factors and tracheal endoscopic and cytological findings. Vet. Rec., 2001, vol. 148, no. 3, pp. 99–104.

7. Couëtil L. L. Cough, poor performance, mucus in the airways — What is so important about that? Proc 48th Annu Convention Am. Assoc. Equine Pract., 2002, vol. 48, pp. 200–207.

8. Couëtil L. L. Denicola D. B. Blood gas, plasma lactate and bronchoalveolar lavage cytology analyses in racehorses with respiratory disease. Equine Veterinary Journal, 1999, vol. 31, pp. 77–82.

9. Couëtil L. L., Hoffman A. M., Hodgson J., Buechner-Maxwell V., Viel L., Wood J. L. N., Lavoie Jean-Pierre. Inflammatory airway disease of horses. Journal of Veterinary Internal Medicine, 2007, 21, pp. 356–361.

10. Crisman M. V., Scarratt W. K., Zimmerman K. L. Blood proteins and inflammation in the horse. Vet. Clin. North Am. Equine Pract., 2008, vol. 24, pp. 285–297.

11. Davies T., Swan J. Experience with anesthesia in horses in the field conditions. Health of the horses, 2007, no. 11, pp. 24–25. Available at: http://socialvet.ru/blog/vet-horses/2384.html (in Ukrainian)

12. Fogarty U., Buckley T. Bronchoalveolar lavage findings in horses with exercise intolerance. Equine Vet. J., 1991, vol. 23, pp. 434–437.

13. Freeman K. P. A review of cytological specimens from horses with and without clinical signs of respiratory disease. Equine Vet. J., 1993, vol. 25, no. 6, pp. 523–526.

14. Hinchcliff K. W. Exercise-Induced Pulmonary Hemorrhage. Kentucky Equine Research Advances in equine nutrition, 2009, vol. IV. Available at: www.ker.com.

15. Hoffman A. M., Mazan M. R., Ellenberg S. Association between bronchoalveolar lavage cytologic features and airway reactivity in horses with history of exercise intolerance. Amer. J. Vet. Res., 1998, vol. 59, no. 2, pp. 176–181.

16. Hoffman A. M., Viel L. Techniques for sampling the respiratory tract of horses. Vet. Clin. North Am. Equine Pract., 1997, vol. 13, no. 3, pp. 463–475.

17. Leclere M., Magdesian K. G., Kass P. H., Pusterla N., Rhodes D. M. Comparison of the clinical, microbiological, radiological and haematological features of foals with pneumonia caused by Rhodococcus equi and other bacteria. Veterinary Journal, 2011, vol. 187, no. 1, pp. 109–112.

18. Mac Namara B., Bauer S., Iafe J. Endoscopic evaluation of exercise induced pulmonary hemorrhage and chronic obstructive pulmonary disease in association with poor performance in racing Standardbreds. J. Am. Vet. Med. Assoc., 1990, vol. 196, pp. 443–445.

19. Maksymovych I., Siwińska N., Słowikowska M., Żak A., Niedźwiedź A. Postać ciężka astmy koni — nowa nazwa znanej choroby. Weterynaria w terenie, 2016, 3, pp. 74–79. (in Polish)

20. Martin B. B., Beech J., Parente E. J. Cytologic examination of specimens obtained by means of tracheal washes performed before and after high-speed treadmill exercise in horses with a history of poor performance. J. Am. Vet. Med. Assoc., 1999, vol. 214, pp. 673–677.

21. McKane S. A., Canfield P. J., Rose R. J. Equine bronchoalveolar lavage cytology: survey of Thoroughbred racehorses in training. Aust. Vet. J., 1993, vol. 70, pp. 401–404.

22. Meyer T. S., Fedde M. R., Gaughan E. M., Langsetmo I., Erickson H. H. Quantification of exercise-induced pulmonary haemorrhage with bronchoalveolar lavage. Equine Vet. J., 1998, vol. 30, pp. 284–288.

23. Moore B. R., Krakowka S., Robertson J. T., Cummins J. M. Cytologic evaluation of bronchoalveolar lavage fluid obtained from Standardbred racehorses with inflammatory airway disease. Am. J. Vet. Res., 1995, vol. 56, pp. 562–567.

24. Morley P. S., Bromberek J. L., Saulez M. N., Hinchcliff K. W., Guthrie A. J. Exercise-induced pulmonary haemorrhage impairs racing performance in Thoroughbred racehorses. Equine Veterinary Journal, 2015, vol. 47, no. 3, pp. 358–365.

25. Morrison K. E., Slocombe R. F., McKane S. A., Dargaville P. A. Functional and compositional changes in pulmonary surfactant in response to exercise. Equine Vet. J. Suppl., 1999, vol. 31, pp. 62–66.

26. Muir W. W., Hubbell J. A. E. Equine Anesthesia: Monitoring and Emergency Therapy. 2nd ed. St. Louis, Saunders-Elsevier, 2009, 478 p.

27. Niedzwiedz A., Jaworski Z., Tykalowski B., Smialek M. Neutrophil and macrophage apoptosis in bronchoalveolar lavage fluid from healthy horses and horses with recurrent airway obstruction (RAO). BMC Veterinary Research. Electronic resource, 2014, 10, 29. Available at: http://www.biomedcentral.com.

28. Niedźwiedź A., Maksymovych I., Kubiak K., Nicpoń J., Leno M., Rusyn V. Additional diagnostic procedures for equine respiratory diseases. Scientific Messenger LNUVMBT named after S. Z. Gzhytsky, 2016, vol. 18, no. 2 (66), pp. 140143. (in Ukrainian)

29. Pascoe J. R. Exercise-induced pulmonary hemorrhage: A unifying concept. Proc. 45th Amer. Assoc. Equine Practit., 1996, pp. 220–226.

30. Robinson N. E., Derksen F. G. Small airway obstruction as a cause of exercise-associated pulmonary hemorrhage. Proc. 26th Amer. Assoc. Equine Practit., 1980, pp. 421–430.

31. Sánchez A., Couëtil L. L., Ward M. P., Clark S. P. Effect of airway disease on blood gas exchange in racehorses. Journal of Veterinary Internal Medicine, 2005, vol. 19, pp. 87–92.

32. Schroter R. C., Marlin D. J., Denny E. Exercise-induced pulmonary haemorrhage (EIPH) in horses results from locomotory impact induced trauma — a novel, unifying concept. Equine Vet. J., 1998, vol. 30, pp. 186–192.

33. Sikora J. Choroby układu oddechowego koni: poradnik dla praktykujących lekarzy weterynarii. II wydanie. Warszawa: Wydawnictwo SI-MA, 2009, 148 s. (in Polish)

34. Smith B. L. Aguilera-Torejro E., Tyler W. S. Endoscopic anatomy and map of the equine bronchial tree. Equine Veterinary Journal, 1994, vol. 26, pp. 283–290.

35. Walker H. J., Evans D. L., Slocombe R. F., Hodgson J. L., Hodgson D. R. Effect of corticosteroid and bronchodilator therapy on bronchoalveolar lavage cytology following intrapulmonary blood inoculation. Equine Vet. J. Suppl., 2006, vol. 36, pp. 516–522.

36. West J. B. Fragility of pulmonary capillaries. Journal of Applied Physiology, 2013, vol. 115, no. 1, pp. 1–15.

скачати повний текст статті в форматі PDF