ПОКАЗНИКИ ЖИРНОКИСЛОТНОГО СПЕКТРУ ЛІПІДІВ СИРОВАТКИ КРОВІ ЩУРІВ ЗА ШТУЧНОГО ГІПОБІОЗУ

Рейтинг користувача: 0 / 5

Неактивна зіркаНеактивна зіркаНеактивна зіркаНеактивна зіркаНеактивна зірка
 

Bìol. Tvarin, 2017, Volume 19, Issue 2, pp. 115120                                            http://dx.doi.org/10.15407/animbiol19.02.115

ПОКАЗНИКИ ЖИРНОКИСЛОТНОГО СПЕКТРУ ЛІПІДІВ СИРОВАТКИ КРОВІ ЩУРІВ ЗА ШТУЧНОГО ГІПОБІОЗУ

А. О. Уманська1, Д. О. Мельничук1, С. Д. Мельничук2, Л. Г. Калачнюк1, В.С. Морозова1

ann.umanska@ukr.net, serge.melnychuk@gmail.com, kalachnyuk_liliya@nubip.edu.ua

1Національний університет біоресурсів і природокористування України,
вул. Героїв Оборони 15, м. Київ, 03041, Україна

2Китайсько-Український науково-дослідний інститут наук про життя,
Вест ген та роад, 135, к. 204, м.
Чжуцзі, провінція Чжецзян, КНР

Перспективними й актуальними для медицини були і залишаються дослідження способів загального знеболювання, консервації крові тощо на основі введення організму устан штучного гіпобіозу, обов’язковими умовами якого є гіпоксія, гіпотермія і гіперкапнія. За зниженого рівня життєдіяльності організму вумовах низької температури навколишнього середовища одна із провідних ролей у функціонуванні біологічних мембран та регуляції метаболізму належить ліпідним сполукам. Тому з метою вивчення адаптації функціональних особливостей організму було визначено вміст триацилгліцеролів, холестеролу, високомолекулярних карбонових кислот та ліпопротеїнів високої (ЛПВЩ), низької (ЛПНЩ) і дуже низької (ЛПДНЩ) щільності у сироватці крові щурів за звичайних умов, штучного гіпобіозу та через 24 год після виходу з нього.

За дії факторів гіперкапнії, гіпоксії і гіпотермії щурів вводили в стан штучного гіпобіозу. Вміст вказаних вище ліпідних сполук визначали за загальноприйнятими методами у сироватці крові щурів трьох груп: контрольної (1а) і двох дослідних (2а — стан штучного гіпобіозу і 3я— через 24 год після виходу зістану штучного гіпобіозу).

Було встановлено, що за стану гіпобіозу жирнокислотний спектр ліпідів сироватки крові якісно залишався незмінним, тоді як у кількісному їх вмісті спостерігався певний вірогідний перерозподіл, а саме: збільшення міристинової, пальмітинової і стеаринової, зменшення лінолевої, ліноленової і докозагексаєнової кислот.

Вміст холестеролу, ліпопротеїнів низької і високої щільності залишався без суттєвих змін у сироватці крові щурів усіх груп, тоді як вірогідно зростала кількість триацилгліцеролів і ліпопротеїнів дуже низької щільності (на ~30 %) у тварин за стану штучного гіпобіозу та через 24 год після виходу з нього.

Ключові слова: ЛІПІДИ, ЛІПОПРОТЕЇНИ, ГІПОБІОЗ, ГІПЕРКАПНІЯ, ГІПОКСІЯ, СИРОВАТКА КРОВІ, ЩУРИ

1. Afonin G. B., Kuyun L. A. Lipids, free radicals the reply immune. National Medical University, 2000, 285 p. (in Ukrainian)

2. Ashmarin I. P., Sosulina L. Y., Sukhov G. S., Kuzmin V. S. ADP-ribose, and ribose-cADP endogenous regulators of cellular ionic ballance cardiotropic effect of ADP-ribose. Advances of Physiological Sciences, 2006, no. 1, pp. 3–17.

3. Banerjee P. S., Ma J., Hart G. W. Diabetes-associated dysregulation of O-GlcNAcylation in rat cardiac mitochondria. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2015, vol. 112, no. 19, pp. 6050–6055. DOI: 10.1073/pnas.1424017112.

4. Baraboi V. A. Bioantioxidants. Kyiv, Book Plus, 2006, 481 p. (in Ukrainian)

5. Brand M. D., Couture P. L. Evolution of energy metabolism. Proton permeability of the inner membrane of liver membrane of liver mitochondria is greater in a mammal than in a reptile. Ukrainian Biochemical Journal, 1991, vol. 275, pp. 81–86.

6. Dolgov V. Laboratory diagnosis of metabolic disorders lipids. Moscow, Medicine, 2001, 218 p. (in Russian)

7. Folch J., Lees M., Sloane Stanley C. A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. Ukrainian Biochemical Journal, 1957, 226 (1), pp. 497–511.

8. Guglielmino K., Jackson K., Harris T. R., Vu V., Dong H., Dutrow G., Evans J. E., Graham J., Cummings B. P., Havel P. J., Chiamvimonvat N., Despa S., Hammock B. D., Despa F. Pharmacological inhibition of soluble epoxide hydrolase provides cardioprotection in hyperglycemic rats. American Journal of Physiology Heart and Circulatory Physiology, 2012 vol. 303, no. 7, pp. H853–H862. DOI: 10.1152/ajpheart.00154.2012.

9. ISO, HOST 31663-2012 Plant oils and animal fats. Determination of mass fraction of methyl ether of fatty acids by Gas chromatography. Moscow, 2012.

10. Jastroch M., Giroud S., Barrett P., Geiser F., Heldmaier G., Herwig A. Seasonal Control of Mammalian Energy Balance: Recent Advances in the Understanding of Daily Torpor and Hibernation. Journal of Neuroendocrinology, 2016, vol. 28, no. 11. DOI: 10.1111/jne.12437.

11. Kamyshnikov V. S. Handbook of clinical and biochemical studies, and laboratory diagnosis. Moscow, MEDpress-Inform, 2004, pp. 524–526. (in Russian)

12. Ketsa O. V., Shmarakov I. O., Marchenko M. M. Lipid peroxidation in cardiac mitochondrial fraction of rats exposed to different supplementation with polyunsaturated fatty acids. Biomedical Chemistry, 2016, vol. 62, no. 1, pp. 50–55. DOI: 10.18097/PBMC20166201050.

13. Klimov A. N., Nikulcheva N. G. Exchange of lipids and lipoproteins and its disorders. 1999, 512 p.

14. Melnychuk D. O., Melnychuk S. D., Arnauta O. V. Influence of carbon dioxide on the environment preservation of red blood cells in stored blood of animals. Scientific Bulletin of NAU, 2004, no. 75, pp. 163–165.

15. Melnychuk S. D. Key figures acid-base status blood and metabolic hibernation and when general anesthesia for the amputation. Ukrainian Biochemical Journal, 2001, vol. 73 (6), pp. 80–83.

16. Melnychuk S. D. Main indicators of acid-base status of blood and metabolic processes of dormancy and general anesthesia for the amputation of a limb. Ukrainian Biochemical Journal, 2001, vol. 73, no. 6, pp. 80–83.

17. Melnychuk S. D., Melnychuk D. O. Animal dormancy (molecular mechanisms and practical for Agriculture and Medicine). A monograph. Kyiv, Publishing Center NAU, 2007, p. 220 (in Ukrainian)

18. Melnychuk S. D., Rogovskiy S. P., Melnychuk D. O. Features of the acid-base balance and Nitrogen metabolism in rats under conditions of artificial hibernation. Ukrainian Biochemical Journal, 1995, vol. 67 (4), pp. 67–75.

19. Nazarenko G. I., Kiskun A. A. Clinical evaluation of laboratory results. Moscow, Medicine, 2002, pp. 535–544. (in Russian)

20. Nelson D. L., Cox M. M. Lehninger Principles of Biochemistry. 7th ed.. New York, W. H. Freeman, 2017, 1328 p.

21. Ostapchenko L. I., Mikhailik I. V. Biological membranes: methods of investigation of structure and function. A manual. Kyiv, Kyiv University, 2006, 211 p.

22. Sklyarov O. J. The biochemical composition of body fluids and cell-diagnostic value. Kyiv, Health, 2004, 188 p. (in Ukrainian)

23. Starostin V. K. Degteva S. A Cholinesterase: methods of analysis and diagnostic value. Novosibirsk, Vector Best, 2008, 35 p. (in Russian)

24. Storey K. B., Storey J. M. Molecular Physiology of Freeze Tolerance in Vertebrates. Physiological Reviews, 2017, vol. 97, no. 2, pp. 623–665. DOI: 10.1152/physrev.00016.2016.

скачати повний текст статті в форматі PDF