ДОПОВНЕННЯ СХЕМИ СТИМУЛЯЦІЇ АНТИЕСТЕРАЗНОЮ РЕЧОВИНОЮ ПОЛІПШУЄ ПОКАЗНИКИ ЯГНІННЯ ОВЕЦЬ

Bìol. Tvarin, 2019, volume 21, issue 4, pp. 58–64

ДОПОВНЕННЯ СХЕМИ СТИМУЛЯЦІЇ АНТИЕСТЕРАЗНОЮ РЕЧОВИНОЮ ПОЛІПШУЄ ПОКАЗНИКИ ЯГНІННЯ ОВЕЦЬ

І. В. Лобачова, В. С. Яковчук

Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

Інститут тваринництва степових районів імені М. Ф. Іванова «Асканія-Нова» — Національний науковий селекційно-генетичний центр з вівчарства,
вул. Соборна, 1, смт Асканія-Нова, Чаплинський р-н, Херсонська обл., 75230, Україна

Більшість порід овець виявляють сезонність репродукції. Для можливості осіменіння поза естральним сезоном вівцематки отримують гормональну стимуляцію. Базова схема стимуляції охоплює обробку гонадотропінами на фоні попередньої гестагенізації. Найзручнішою формою тривалого насичення організму гестагенами є вагінальний песарій. Проте ефективність такої схеми не завжди достатня. Припускається, що однією з причин може бути подразнення стінок піхви матеріалом песаріїв, а один зі способів зменшення цього — обробка тварин речовинами, які впливають на окремі ланки нервової системи. Метою досліду було порівняти ефективність базової схеми стимуляції статевої активності овець в анестральний сезон зі схемою, доповненою застосуванням препарату з антихолінестеразною активністю «Прозерин». Для цього формували 2 групи (контрольну та дослідну) 2-річних вівцематок, яких утримували в одному загоні. Гестагенізацію усіх тварин започатковували 11 квітня встромлянням піхвових песаріїв з гестагеном («Кронолон», 30 мг/пес., «Intervet»), які вилучали 23 квітня. Для стимуляції фолікулогенезу 22 квітня усім тваринам ін’єктували по 500 ІО препарату «Сергон» (Чехія) і 1 мл 2,5 %-го масляного розчину прогестерону. Крім цього, усім тваринам у дні вставки та вилучення песаріїв ін’єктували по 2,5 мл препарату «СуперАміно-С» (Південна Корея), який містить суміш незамінних амінокислот та вітамінів групи В. Прозерин у дозі 1 мл на ін’єкцію на голову ін’єктували дослідним тваринам двічі — у дні вставки та вилучення песаріїв. Усіх тварин без перевірки на наявність статевої охоти штучно осіменяли свіжоотриманою спермою один раз у день три доби поспіль з початком на наступний день після вилучення песаріїв. В дослідній групі ягнились 91,6 % тварин, в контрольній — 70,6 %. Багатоплідність при ягнінні у дослідній групі становила 1,18±0,19 гол./гол. Порівняно з 1,68±0,34 гол./гол. у контрольній. Показник плодючості при ягнінні у дослідній групі становив 108,5 проти 118,5 % у контролі, при відлученні у 2-місячному віці — 83,3 проти 74,1 %. Результати досліду показали, що доповнення базової схеми 2-разовою обробкою препаратом з антиестеразною дією «Прозерин» зменшує багатоплідність, але збільшує результативність осіменіння та покращує виживаність ягнят до відлучення, що загалом сприяє збільшенню ефективності гормональної стимуляції статевої активності овець в анестральний сезон. Припущено, що позитивний вплив нейротропного препарату зміг проявитись завдяки одночасному насиченню організму тварин сумішшю незамінних амінокислот та вітамінів групи В.

Ключові слова: ВІВЦЯ, СТАТЕВА ОХОТА, ГОРМОНАЛЬНА СТИМУЛЯЦІЯ, ПРОЗЕРИН

  1. Anderson M., Connors J. M., Hardy S. L., Valent M., Goodman R. L. Thyroid hormones mediate steroid-independent seasonal changes in luteinizing hormone pulsatility in the ewe. Biology of Reproduction, 2002, vol. 66, issue 3, pp. 701–706. https://doi.org/10.1095/biolreprod66.3.701
  2. Atkinson S., Adams N. R., Martin G. B. Role of progesterone in ovarian follicular growth and development in the sheep. Animal Production in Australia, 1998, vol. 22, pp. 233–236. Available at: http://www.livestocklibrary.com.au/bitstream/handle/1234/8855/Atkinson98.PDF?sequence=1
  3. Boscos C. M., Samartzi F. C., Dellis S., Rogge A., Stefanakis A., Krambovitis E. Use of progestagen-gonadotrophin treatments in estrus synchronization of sheep. Theriogenology, 2002, vol. 58, issue 7, pp. 1261–1272. https://doi.org/10.1016/S0093-691X(02)01040-3
  4. Breen K. M., Oakley A. E., Pytiak A. V., Tilbrook A. J., Wagenmaker E. R., Karsch F. J. Does cortisol acting via the type II glucocorticoid receptor mediate suppression of pulsatile luteinizing hormone secretion in response to psychosocial stress? Endocrinology, 2007, vol. 148, issue 4, pp. 1882–1890. https://doi.org/10.1210/en.2006-0973
  5. Breen K. M., Stackpole C. A., Clarke I. J., Pytiak A. V., Tilbrook A. J., Wagenmaker E. R., Young E. A., Karsch F. J. Does the type II glucocorticoid receptor mediate cortisol-induced suppression in pituitary responsiveness to gonadotropin-releasing hormone? Endocrinology, 2004, vol. 145, issue 6, pp. 2739–2746. https://doi.org/10.1210/en.2004-0123
  6. Christensen A. C. M., Haresign W., Khalid M. Progesterone exposure of seasonally anoestrous ewes alters the expression of angiogenic growth factors in preovulatory follicles. Theriogenology, 2014, vol. 81, issue 2, pp. 358–367. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2013.10.005
  7. Dutt R. H. Induction of estrus and ovulation in anestrual ewes by use of progesterone and pregnant mare serum. Journal of Animal Science, 1953, vol. 12, issue 3. pp. 515–523. https://doi.org/10.2527/jas1953.123515x
  8. DeNicolo G. Accelerated and out-season lamb production in New Zealand. A thesis for the PhD degree, Massey University, Palmerston North, New Zealand, 2007.
  9. Graham J. D., Clarke C. L. Physiological action of progesterone in target tissues. Endocrine Reviews, 1997, vol. 18, issue 4, pp. 502–519. https://doi.org/10.1210/edrv.18.4.0308
  10. Karsch F. J., Dahl G. E., Hachigian T. M., Thrun L. A. Involvement of thyroid hormones in seasonal reproduction. Journal of Reproduction and Fertility. Supplement,1995, vol. 49, pp. 409–422.
  11. Keefe G. P., Wichtel J. J. Evaluation of melengestrol acetate and equine chorionic gonadotropin for out-of-season breeding in sheep on Prince Edward Island. The Canadian Veterinary Journal, 2000, vol. 41, issue 3, pp. 211–214.
  12. Manes J., Hozbor F., Alberio R., Ungerfeld R. Intravaginal placebo sponges affect negatively the conception rate in sheep. Small Ruminant Research, 2014, vol. 120, issue 1, pp. 108–111. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2014.05.006
  13. Manes J., Fiorentino M. A., Martino S. S., Ungerfeld R. Changes in the vaginal microbiota in ewes after insertion of intravaginal sponges at different stages of the oestrous cycle. Livestock Science, 2018, vol. 208, pp. 55–59. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2017.11.023
  14. Mayerhofer A., Fritz S. Ovarian acetylcholine and muscarinic receptors: hints of a novel intrinsic ovarian regulatory system. Microscopy Research and Technique, 2002, vol. 59, issue 6, pp. 503–508. https://doi.org/10.1002/jemt.10228
  15. Metodiev N., Raicheva E. Short term progestagen treatment for estrus synchronization at nulliparous ewes from the synthetic population Bulgarian milk. Journal of International Scientific Publications: Agriculture and Food, 2014, vol. 2, pp. 382–386. Available at: https://www.scientific-publications.net/get/1000000/1401624906577877.pdf
  16. Rutte J., Lucero S., Key S., Daniels M., Rodriquez F., Yim H.S. Ovine estrus synchronization and superovulation using norgestomet B and follicle stimulating hormone-pituitary. Theriogenology, 1988, vol. 30, issue 2, pp. 421–427. https://doi.org/10.1016/0093-691X(88)90190-2
  17. Sirjani M. A., Shakir M. H., Kohram H., Eskanderinasab M. P., Moakhar H. K. The effects of pregnant mare serum gonadotropin (PMSG) injection a day prior or at controlled intravaginal drug-releasing (CIDR) removal on multiple births in Afshari ewes. African Journal of Biotechnology, 2011, vol. 10, issue 57, pp. 12363–12367. Available at: https://www.ajol.info/index.php/ajb/article/download/96416/85743
  18. Steffl M., Schweiger M., Wessler I., Kunz L., Mayerhofer A., Amselgruber W. M. Non-neuronal acetylcholine and choline acetyltransferase in oviductal epithelial cells of cyclic and pregnant pigs. Anatomy and Embryology, 2006, vol. 211, pp. 685–690. https://doi.org/10.1007/s00429-006-0132-y
  19. Topurko Z. S. Biotechnological methods of oestrus induction and multiple births in sheep with use of biologically active substances. Cand. agricultural sci. diss., Lviv, 2008. (in Ukrainian)
  20. Urra J., Blohberger J., Tiszavari M., Mayerhofer A., Lara H. E. In vivo blockade of acetylcholinesterase increases intraovarian acetylcholine and enhances follicular development and fertility in the rat. Scientific Reports, 2016, vol. 6, article number 30129. https://doi.org/10.1038/srep30129
  21. S. Lamb Resource Center. Accelerated Lambing Cycles, 2016. Available at: http://lambresourcecenter.com/wp-content/uploads/2016/11/ALB-Productivity-Fact-Sheet-ACCELERATED-LAMBING-CLREV-10-14-16.pdf
  22. Wagenmaker E. R., Breen K. M., Oakley A. E., Tilbrook A. J., Karsch F. J. Psychosocial stress inhibits amplitude of gonadotropin-releasing hormone pulses independent of cortisol action on the type II glucocorticoid receptor. Endocrinology, 2009, vol. 150, issue 2, pp. 762–769. https://doi.org/10.1210/en.2008-0757
  23. Webster J. R., Moenter S. M., Woodfill C. J., Karsch F. J. Role of the thyroid gland in seasonal reproduction. II. Thyroxine allows a season-specific suppression of gonadotropine secretion in sheep. Endocrinology, 1991, vol. 129, issue 1, pp. 176–183. https://doi.org/10.1210/endo-129-1-176
  24. Wessler I. K., Kirkpatrick C. J. Non-neuronal acetylcholine involved in reproduction in mammals and honeybees. Journal of Neurochemistry, 2017, vol. 142, issue S2, pp. 144–150. https://doi.org/10.1111/jnc.13953
  25. Wheaton J. E., Carlson K. M., Windels H. F., Johnson L. J. CIDR: A new progesterone-releasing intravaginal device for induction of estrus and cycle control in sheep and goats. Animal Reproduction Science, 1993, vol. 33, issue 1–4, pp. 127–141. https://doi.org/10.1016/0378-4320(93)90111-4
  26. WO/2000/033840. Use of acetylcholinesterase inhibitors on the modulation of the hypothalamic-pituitary-gonadal axis. A61K 31/195, Davis Bonnie, Dat. Publ. 15.06.2000.

gslogoICLOGO

cr

nbuv

WorldCat Logo

oa

Search