Біологія тварин

Ефективність робочих розчинів дезінфекційного засобу «Біолайд» за дії на грамнегативні та грампозитивні бактерії

О. М. Чечет¹, В. Л. Коваленко², Т. О. Гаркавенко¹, О. І. Горбатюк¹, Т. Г. Козицька¹

Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

¹Державний науково-дослідний інститут з лабораторної діагностики і ветеринарно-санітарної експертизи,
вул. Донецька, 30, м. Київ, 03151, Україна

²Державний науково-контрольний інститут біотехнології і штамів мікроорганізмів,
вул. Донецька, 30, м. Київ, 03151, Україна

Наведено аналіз результатів дослідження дезінфекційного засобу «Біолайд» для використання у птахівництві та інших галузях сільського господарства, оскільки на сьогодні залишається актуальним розроблення дешевих та ефективних дезінфектантів. Останніми роками птахівництво має тенденцію до швидкого розвитку, запити населення на цю продукцію помітно зросли. За комплексного підходу у виробництві курятини можна підвищити продуктивність птахівницьких підприємств, енергоефективність та знизити собівартість продукції. Одну з важливих ролей відіграє дезінфекція ефективними та недорогими засобами. За розроблення нових ефективних дезінфекційних засобів, основна мета проведених досліджень полягала у визначенні ефективності дії робочих розчинів у концентраціях 0,1; 0,2; 0,25 та 0,5% на грамнегативні E. сoli АТСС 25922 та грампозитивні S. aureus АТСС 25923 впродовж різних періодів часу — 20, 30, 60 та 120 хв. після симуляції білкового забруднення. Тестові культури E. сoli АТСС 25922 та S. aureus АТСС 25923 у ліофілізованому вигляді зберігалися в холодильнику за температури –70±5°С. За пересіву на живильні середовища було відновлено метаболічні процеси і перевірено їх відповідність основним типовим властивостям цього виду збудників. Симуляцію білкового забруднення проводили за допомогою стерильної інактивованої сироватки крові великої рогатої худоби у кількості 40,0% до обсягу використаної бактеріальної суспензії. У лабораторних випробуваннях як тест-об’єкти використовували гладкі поверхні кахлю площею 100 с?м². Аналіз отриманих результатів досліджень показав високу ефективність 0,5% робочих розчинів дезінфекційного засобу «Біолайд» щодо тестових культур E. сoli АТСС 25922 та S. aureus АТСС 25923 протягом 60 хв., оскільки ця концентрація робочого розчину дезінфектанту і час впливу забезпечували знищення на 99,99–100,0% грамнегативних та грампозитивних мікроорганізмів за імітації білкового забруднення тест-об’єктів.

Ключові слова: дезінфекційний засіб «Біолайд», робочі розчини, білкова забрудненість, тестова культура E. сoli АТСС 25922, тестова культура S. aureus АТСС 25923, тест-об’єкти

1. Addie DD, Boucraut-Baralon C, Egberink H, Frymus T, Gruffydd-Jones T, Hartmann K, Horzinek MC, Hosie MJ, Lloret A, Lutz H, Marsilio F, Pennisi MG, Radford AD, Thiry E, Truyen U, Möstl K. Disinfectant choices in veterinary practices, shelters and households: ABCD guidelines on safe and effective disinfection for feline environments. Feline Med. Surg. 2015; 17 (7), 594–605. DOI: 10.1177/1098612X15588450.
2. Fotina GA. Determination of the toxicity of the drug “Bi-des” for the disinfection of poultry objects. messenger LNUVMBT S. Z. Gzhytsky. Vet. ser. 2014; 16; 2 (1): 340–347. (in Ukrainian)
3. Harkavenko TO, Kovalenko VL, Horbatiuk OI, Pinchuk NH, Kozytska TH, Harkavenko VM, Ordynska DO. Methodical recommendations for the purpose of bactericidal activity and control of the presence of bacteriostatically effective disinfectants. Kyiv, DNDILDZBEVSE. 2020. (in Ukrainian)
4. Hoshko KO. Analisis of efficiency of the methods disinfection and sterilization in dental. Medicine and Pharmacy. Scientific Collection “InterConf+”: International scientific discussion: problems, tasks and prospects, June 21–22. 2021; 6: 238–245. DOI: 10.51582/interco21-22.06.2021.26. (in Ukrainian)
5. Ivchenko VM (ed.). The handbook on sanitary-microbiological methods for research of food products and environmental objects. Bila Tserkva, 2004: 242 p. (in Ukrainian)
6. Kotsiumbas IY, Tishyn OL, Khomiak RV. Bacteriological properties of Aerosan Sci. Tech. Bulletin SSRCI Vet. Med. Prod. Feed Add. 2012; 13 (3–4): 211–214. (in Ukrainian)
7. Kovalenko VL, Ponomarenko GV, Kukhtyn MD, Midyk SV, Horiuk YV, Garkavenko VM. Changes in lipid composition of Escherichia coli and Staphylococcus aureus cells under the influence of disinfectans Barez, Biochlor and Geocide. J. Ecol. 2018; 8 (1): 547–550. DOI: 10.15421/2018_248. (in Ukrainian)
8. Kovalenko VL, Ponomarenko GV, Kukhtyn MD, Paliy AP, Bodnar OO, Rebenko HI, Kozytska TG, Makarevich TV, Ponomarenko OV, Palii AP. Evaluation of acute toxicity of the “Orgasept” disinfectant. J. Ecol. 2020; 10 (4): 273–278. DOI: 10.15421/2020_199. (in Ukrainian)
9. Kuo J. Disinfection processes. Water Environ. Res. 2017; 89 (10): 1206–1244. DOI: 10.2175/106143017X15023776270278.
10. Kwon D, Lim YM, Kwon JT, Shim I, Kim E., Lee DH, Yoon B, Kim P, Kim HM. Evaluation of pulmonary toxicity of benzalkonium chloride and triethylene glycol mixtures using in vitro and in vivo Environ. Toxicol. 2019; 34 (5): 561–572. DOI: 10.1002/tox.22722.
11. Li X, Wu Z, Dang C, Zhang M, Zhao B, Cheng Z, Chen L, Zhong Z, Ye Y, Xia Y. A metagenomic-based method to study hospital air dust resistome. Eng. J. 2021; 406: 126854. DOI: 10.1016/j.cej.2020.126854
12. Liulin PV, Severin RV, Gontar AM. Research of sorption and disinfecting properties of the “Mikadez” layer dryer. Sci. Tech. Anim. Husb. Nat. Management. 2021; 7: 63–67. DOI: 10.31890/vttp.2021.07.10. (in Ukrainian)
13. Montagna MT, Triggiano F, Barbuti G, Bartolomeo N, De Giglio O, Diella G, Lopuzzo M, Rutigliano S, Serio G, Caggiano G. Study on the in vitro activity of five disinfectants against nosocomial bacteria. J. Environ. Res. Public Health. 2019; 16 (11): 1895. DOI: 10.3390/ijerph16111895.
14. Moshynets OV, Spiers AJ. Viewing biofilms within the larger context of bacterial aggregations. In: Microbial Biofilms — Importance and Applications. Ed. by D Dhanasekaran, N Thajuddin. 2016: 3–22. DOI: 10.5772/62912.
15. Nechyporenko OL, Berezovskyi AV, Shkromada OI, Ulko LH, Nychyk SA. Assessment of ADG disinfectant cumulative and metabolic rate effect in laboratory animals. Biotechnol. 2020; 36: 128–137. DOI: 10.31073/vet_biotech36-13. (in Ukrainian)
16. Opryshko VI, Prokhach AV, Prokhach AV, Kurt-Akhmetova HS. Amazing nearby. Effective and safe protection against nosocomial infections. Surg. Perinatal Med. 2021; 11 (1/39): 73–76. DOI: 10.24061/2413-4260.XI.1.39.2021.10. (in Ukrainian)
17. Paliy AP, Ishchenko KV, Dubin RA. Effectiveness of aldehyde disinfectant against the causative agents of tuberculosis in domestic animals and birds. J. Ecol. 2018; 8 (1): 845–850. DOI: 10.15421/2018_283. (in Ukrainian)
18. Paliy AP, Ishchenko KV, Marchenko MV, Dubin RA. Effectiveness of aldehyde disinfectant against the causative agents of tuberculosis in domestic animals and birds. J. Ecol. 2018; 8 (1): 845–850. DOI: 10.15421/2018_283. (in Ukrainian)
19. Paliy A, Zavgorodniy A, Stegniy B, Gerilovych A. A study of the efficiency of modern domestic disinfectants in the system of TB control activities. Agricultural Science and Practice. 2015; 2 (2): 26–31. DOI: 10.15407/agrisp2.02.026. (in Ukrainian)
20. Ponomarenko GV, Kovalenko VL, Ponomarenko OV, Balackiy YO. Effect of microbicide on lactic acid and metal nanoparticles on laboratory animals. J. Ecol. 2017; 7 (4): 482–485. DOI: 10.15421/2017_148. (in Ukrainian)
21. Pustovit NA, Pinchuk NH. The use of test lenses in the disinfection systems in the fig against campylobacterios. NUBIP Rep. 2019; 78 (2): 75–85. DOI: 10.14738/dopovidi2019.02.021. (in Ukrainian)
22. Soto E, Abdelrazek SMR, Basbas PJ, Duignan PJ, Rios C, Byrne BA. Environmental persistence and disinfectant susceptibility of Klebsiella pneumoniae recovered from pinnipeds stranded on the California Coast. Microbiol. 2019; 241: 108554. DOI: 10.1016/j.vetmic.2019.108554.