Bìol. Tvarin, 2014, volume 16, issue 3, pp. 110–115

Інтенсивність дихання сперми та виживання Сперміїв за додавання таурину в розріджені еякуляти бугая

Р. Д. Остапів1,2, В. В. Манько1, І. М. Яремчук3, Д. Д. Остапів3

oЦя електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

1Львівський національний університет імені Івана Франка,

вул Грушевського, 4; м. Львів, 79005, Україна

2Державний науково-дослідний контрольний інститут ветеринарних препаратів

та кормових добавок, вул. Донецька, 11, м. Львів, 79019, Україна

3Інститут біології тварин НААН, вул. В.Стуса, 38; м. Львів, 79034, Україна

Вивчали дихальну активність сперми і виживання сперміїв за різних концентрацій таурину в розріджених еякулятів бугая. Інтенсивність поглинання кисню спермою визначали полярографічно з використанням електрода Кларка (при температурі 38,5 °С), виживання сперміїв — за зберігання розбавленої сперми (при температурі 0–4° С) до припинення прямолінійного поступального руху. До розрідженої сперми фосфатно-сольовим буфером та синтетичними середовищами (лактозо-жовтково-гліцериновим розріджувачем та «АндроМед») додавали таурин у концентраціях 0,175, 0,35, 0,525 та 0,7 ммоль/л. Дослідженнями встановлена залежність між інтенсивністю дихання сперми бугая і виживанням сперміїв за використання різних середовищ розрідження та під впливом таурину у різних концентраціях.Збільшення концентрації таурину в розріджених еякулятах бугая знижує інтенсивність дихання сперми. Найбільш виражене зменшення швидкості поглинання кисню виявлено після розрідження еякулятів фосфатно-сольовим буфером, найнижче — за розбавлення середовищем «АндроМед». За розрідження сперми бугая фосфатно-сольовим буфером виживання статевих клітин підвищується зі збільшенням концентрації таурину. При розбавлені еякулятів бугая лактозо-жовтково-гліцериновим розріджувачем, залежність виживання сперміїв від вмісту таурину характеризувалась максимальною величиною за додавання 0,35 ммоль/л. Розрідження еякулятів середовищем «АндроМед» виживання сперміїв із збільшенням концентрації таурину зменшувалося. При цьому величина фізіологічного показника за концентрації 0,7 ммоль/л знизилась на 18,2 % порівняно з контролем. Можливою причиною позитивного впливу таурину на виживання статевих клітин є здатність підтримувати трансмембранний потенціал мітохондрій і впливати на утилізацію субстратів, його антиоксидантні властивості або, за негативного ефекту, здатність котранспортуватися у клітину з іонами Na+.

Ключові слова: інтенсивність дихання, таурин, виживання сперміїв, сперма, бугай

  1. De la Puerta C., Arrieta F. J., Balsa J. A., Botella-Carretero J. I., Zamarrón I., Vázquez C. Taurine and glucose metabolism: a review. Nutr. Hosp., 2010, vol. 25, pp. 350–368.
  2. Huxtable R. J. Physiological actions of taurine. Physiol. Rev., 1992. vol. 72, pp.101–160. https://doi.org/10.1152/physrev.1992.72.1.101
  3. Yablonskiy V. A., Homin S. P., Zaviruha V. I. Biotechnological and molecular-genetic basis of animal reproduction. Lviv, TzOV VF Afisha, 2009, 218 p. (in Ukrainian)
  4. Aitken R. J., Clarkson J. S. Cellular basis of defective sperm function and its association with the genesis of reactive oxygen species by human spermatozoa. J. Reprod. Fert., 1987, vol. 81, pp.459–469. https://doi.org/10.1530/jrf.0.0810459
  5. Blondin P., Coenen K., Sirard M. The impact of reactive oxygen species on bovine sperm fertilizing ability and oocyte maturation. J. Androl., 1997, vol. 18, pp. 454–460.
  6. O’Byrne M. B., Tipton K. F Taurine-induced attenuation of MPP1 neurotoxicity in vitro: a possible role for the GABAA subclass of GABA receptors. J. Neurochem., 2000. vol.74, pp.2087–2093. https://doi.org/10.1046/j.1471-4159.2000.0742087.x
  7. Alvarez J. G., Storey B. T. Taurine, hypotaurine, epinephrine and albumin inhibit lipid peroxidation in rabbit spermatozoa and protect against loss of motility. Biol. Reprod., 1983, vol.29, pp.548–555. https://doi.org/10.1095/biolreprod29.3.548
  8. Wagtendouk A. M., HaringR.M., Kaal-Lansbergen L. M., Dendaas J. H. Fertilitiy results using bovine semen cryoprezerved with extenders based on egg yolk and soybean extract. Theriogenology, 2000, vol. 54, pp. 57–67. https://doi.org/10.1016/S0093-691X(00)00324-1
  9. Torres-Flores V., Picaz o-Juarez G., Hernandez -Rueda Y., Darszon A., Gonzalez-Martinez M. Sodium influx induced by external calcium chelation decreases human sperm motility. Human Reproduction, 2011, vol. 26, no. 10, pp.2626–2635. https://doi.org/10.1093/humrep/der237
  10. Plohinskiy N. A. Biometrics. Moscow, MHU, 1970, p. 358. (in Russian)
  11. Ribeiro R. A., Bonfleur M. L., Amaral A. G., Vanzela E. C., Rocco S. A., BoscheroA.C., Carneiro E. M. Taurine supplementation enhances nutrient-induced insulin secretion in pancreatic mice islets. Diabetes Metab. Res. Rev., 2009, vol. 25 (4), pp. 370–379. https://doi.org/10.1002/dmrr.959

скачати повний текст статті в форматі PDF

gslogo

ICLOGO

cr

nbuv

ouci0

WorldCat Logo

oa

Search