Біологія тварин

Завантажити повний текст статті у форматі PDF

Bìol. Tvarin. 2020; 22(1): 15–19.
https://doi.org/10.15407/animbiol22.01.015
Received 02.12.2019 ▪ Accepted 11.03.2020 ▪ Published online 01.05.2020

Імуностимулювальна дія бета-глюкану за медикаментозної імуносупресії мурчаків

Львівський національний університет ветеринарної медицини та біотехнологій імені С. З. Ґжицького,
вул. Пекарська, 50, м. Львів, 79010, Україна

Особливістю дії бета-глюканів є вплив на всі популяції лейкоцитів, що супроводжується активацією фагоцитарної функції. Кортикостероїдні гормони мають імуносупресивну дію. Моделювання імуносупресії дало змогу оцінити зміни в крові під впливом дексаметазону, що є діючою речовиною препарату «Дексафорт», та бета-глюкану як імуностимулятора. Гематологічні дослідження для з’ясування імуностимулювальної дії бета-глюкану на тлі медикаментозної імуносупресії «Дексафортом» провели з метою з’ясування імунної реактивності організму мурчаків (Cavia porcellus). В умовах віварію провели дослід на 20-и здорових мурчаках (одна контрольна і три дослідні групи по 5 особин у кожній групі: І група — імуносупресія без імуностимулятора; ІІ група — без імуносупресії з імуностимулятором; ІІІ група — імуносупресія з імуностимулятором). Імуносупресію здійснювали тваринам І та ІІІ дослідних груп дворазово з інтервалом кожні 7 діб: підшкірно вводили препарат «Дексафорт» на основі дексаметазону пролонгованої дії (Intervet Schering-Plough Animal Health, Нідерланди). Як імуностимулятор використовували бета-глюкан в дозі 30 мг на кг маси. Препарат задавали випоюванням 1 раз в день щодня протягом 14 діб тваринам ІІ та ІІІ дослідних груп після другого введення «Дексафорту». За дії «Дексафорту» у крові досліджуваних тварин встановлено зменшення кількості лейкоцитів, зокрема лімфоцитів, що відображає імуносупресивний стан організму. Випоювання тваринам бета-глюкану призводило до збільшення у їх крові кількості лейкоцитів, зокрема лімфоцитів і тромбоцитів.

Ключові слова: мурчаки, бета-глюкан, дексафорт, імунітет, кров, лейкоцити, лімфоцити, нейтрофіли, еозинофіли, мікроспорія

1. Besednova NN, Yvanushko LA, Zviahyntseva TN. Immunotropic properties of 1,3/1,6-β-D-glucans. Antibiotics and chemotherapy. 2000; 2: 37–44. (in Russian)
2. Bohn JA, BeMiller JN. (1→3)-β-D-Glucans as biological response modifiers: a review of structure-functional activity relationships. Carbohydrate Polymers. 1995; 28(1): 3–14. DOI: 10.1016/0144-8617(95)00076-3.
3. Brown GD, Gordon S. Immune recognition. A new receptor for beta-glucans. Nature. 2001; 413: 36–37. DOI: 10.1038/35092620.
4. Brown GD, Taylor PR, Reid DM, Willment JA, Williams DL, Martinez-Pomares L, Wong SYC, Gordon S. Dectin-1 is a major β-glucan receptor on macrophages. J. Exp. Med. 2002; 196(3): 407–412. DOI: 10.1084/jem.20020470.
5. Karput YM. Hematological atlas of farm animals. Minsk, Uradzhai. 1986: 183 p. (in Russian)
6. Kazmirchuk VI, Kovalchuk LV. Clinical immunology and allergology. Vinnytsia, Nova knyha. 2006: 526 p. (in Russian)
7. Kondrakhin YP, Levchenko VY. Methods of Veterinary Clinical Laboratory Diagnosis: a handbook. A.V. Arkhypov, ed. prof. Y. P. Kondrakhin. Moscow, Kolos. 2004: 520 p. (in Russian)
8. Kotiuzhynska S, Gozhenko A, Umanskyi D. Morphofunctional state of mast cells in hyperheparinemia in rats. Fiziolohichnyi zhurnal. 2017; 63(2): 34–39. DOI: 10.15407/fz63.02.034. (in Ukrainian)
9. Lukjanchuk VD, Mishhenko EM, Babenko MN. Beta-glucans as the basis for the creation of immunomodulatory agents. Ukrainian medical chronicle. 2011; 5(85): IX–X. (in Russian)
10. Official Journal of the European Union L276/33. Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. 86/609/EC. 20.10.2010.
11. Okazaki M, Adachi Y, Ohno N, Yadomae T. Structure-activity relationship of(1→3)-β-D-glucans in the induction of cytokine production from macrophages, in vitro. Biol. Pharm. Bull. 1995; 18(10): 1320–1327. DOI: 10.1248/bpb.18.1320.
12. Ramsey I. Small animal formulary. BSAVA. 6^th ed. Reprinted with corrections. 2007: 415 p.
13. Sandula J, Machová E, Hřibalová V. Mitogenic activity of particulate yeast β-(1→3)-D-glucan and its water-soluble derivatives. Int. J. Biol. Macromol. 1995; 17(6): 323–326. DOI: 10.1016/0141-8130(96)81839-3.
14. Seijelid R, Bögwald J, Lundwall Å. Glycan stimulation of macrophages in vitro. Exp. Cell. Res. 1981; 131(1): 121–129. DOI: 10.1016/0014-4827(81)90413-4.
15. Sugiyama A, Hata S, Suzuki K, Yoshida E, Nakano R, Mitra S, Arashida R, Asayama Y, Yabuta Y, Takeuchi T. Oral administration of paramylon, a β-1,3-D-glucan isolated from Euglena gracilis Z inhibits development of atopic dermatitis-like skin lesions in NC/Nga mice. J. Vet. Med. Sci. 2010; 72(6): 755–763. DOI: 10.1292/jvms.09-0526.
16. Thornton BP, Větvicka V, Pitman M, Goldman RC, Ross GD. Analysis of the sugar specificity and molecular location of the beta-glucan-binding lectin site of complement receptor type 3(CD11b/CD18). J. Immunol. 1996; 156(3): 1235–1246.
17. Vlizlo VV, Slivinska LG, Maksymovych IA, Leno MI, Galyas VL. Laboratory diagnostics in veterinary medicine. Reference Book Directory, 2^nd ed. Lviv, 2014: 152 p. (in Ukrainian)
18. Woo YI, Park BJ, Kim HL, Lee M H, Kim J, Yang YI, Kim JK, Tsubaki K, Han DW, Park JC. The biological activities of (1,3)-(1,6)-β-D-glucan and porous electrospun PLGA membranes containing β-glucan in human dermal fibroblasts and adipose tissue-derived stem cells. Biomed. Mater. 2010; 5(4): 104–109. DOI: 10.1088/1748-6041/5/4/044109.