Біологія тварин

Перегляди: 679
Bìol. Tvarin, 2018, volume 20, issue 1, pp. 60–69

ЕФЕКТИВНІСТЬ ЗАСТОСУВАННЯ «АНТИМАСТУ» НА АНТИОКСИДАНТНИЙ ПРОФІЛЬ КРОВІ ТА ВМІСТ ПРОДУКТІВ ПЕРЕКИСНОГО ОКИСНЕННЯ У КОРІВ ІЗ СУБКЛІНІЧНИМ МАСТИТОМ

І. Матюха1, О. Віщур2, Н. Брода1, Д. Мудрак1, Г. Собко2

Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

1Інститут біології тварин НААН,
вул. В. Стуса, 38, м. Львів, 79034, Україна

2Львівський національний університет ветеринарної медицини та біотехнологій імені С. З. Ґжицького,
вул. Пекарська, 50, м. Львів, 79010, Україна

Проведено дослідження на коровах з субклінічною формою маститу з метою оцінювання нового препарату на природній основі. У наших дослідженнях виявили позитивний ефект «Антимасту» як препарату для ін̓єкцій, так і мазі «Антимаст» на загальний стан корів з клінічним маститом та регуляцію про- і антиоксидантного балансу в організмі під час лікування.
Дію ін’єкційного препарату «Антимаст» та мазі «Антимаст» встановлено методом аналізу продуктів перекисного окиснення та антиоксидантного профілю крові й молока великої рогатої худоби. Встановлено збільшення інтенсивності реакцій перекисного окиснення, а також зниження антиоксидантної активності у крові та молоці корів із субклінічним маститом. Середні рівні ТБК-активних продуктів та ліпідних гідропероксидів були вищими у молочних корів з гострим субклінічним маститом порівняно з цими показниками у здорових тварин, що свідчить про негативний стан окиснювального стресу. Після введення експериментального препарату вміст окиснювальних продуктів та одночасна активація антиоксидантних ензимів у крові та молоці корів підтримувалися у фізіологічних межах. Аналогічний ефект, але менш виражений, спостерігали і при застосуванні мазі.
Обидві форми «Антимасту» відіграють роль активаторів ендогенної системи захисту. Ін’єкція інтрацистернально препарату «Антимаст», порівняно з дією мазі, призводить до збільшення активності ензимів, зокрема активність СОД після ін’єкції становила 23,15±0,89 U·мг–1 протеїну порівняно із застосуванням мазі — 22,45±1,08 U·мг–1 протеїну на 9-й день лікування.

Ключові слова: СУБКЛІНІЧНИЙ МАСТИТ, ПЕРЕКИСНЕ ОКИСЛЕННЯ ЛІПІДІВ, АНТИОКСИДАНТНИЙ ЗАХИСТ, ГІДРОПЕРКИСИ ЛІПІДІВ, ОКСИАТИВНИЙ СТРЕС

  1. Bagnicka E., Winnicka A., Jóźwik A., Rzewuska M., Strzałkowska N., Kościuczuk E., Prusak B., Kaba J., Horbańczuk J., Krzyżewski J. Relationship between somatic cell count and bacterial pathogens in goat milk. Small Ruminant Research, 2011, vol. 100, no. 1, pp. 72–77. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2011.04.014
  2. Batracov A. Ja. Treatment and prevention of mastitis in cows. Veterenary, 1977, vol. 2, pp. 68–69. (in Russian)
  3. Beutler E., Dubon O. B., Kelly M. Improved method for the determination of blood glutathione. Journal of Laboratory and Clinical Medicine, 1963, vol. 61, pp. 882–888.
  4. Boulanger V., Zhao X., Lacasse P. Protective Effect of Melatonin and Catalase in Bovine Neutrophil induced Model of Mammary Cell Damage. J. Dairy Sci., 2002, vol. 85, no 3, pp. 562–569. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(02)74109-X
  5. Bozukluhan K., Atakisi E., Atakisi O. Nitric oxide levels, total antioxidant and oxidant capacity in cattle with foot-and-mouth-disease. Kafkas. Univ. Vet Fac. Derg., 2013, vol. 19, no 1, pp. 179–181. https://doi.org/10.9775/kvfd.2012.7244
  6. Celi P. The role of oxidative stress in small ruminants’ health and production. R. Bras. Zootec., 2010, vol. 39, pp. 348–363. https://doi.org/10.1590/S1516-35982010001300038
  7. Dantzer R., Kelley K. W. Twenty years of research on cytokine-induced sickness behavior. Brain Behav. Immun., 2007, vol. 21, no. 2, pp. 153–160. https://doi.org/10.1016/j.bbi.2006.09.006
  8. Halliwell B., Gutteridege J. M. C. Free Radicals in Biology and Medicine. 4th ed. Midsomer Norton, Avon, England, Oxford University Press, 2007.
  9. Halliwell B., Gutteridge J. M. C. Free Radicals in Biology and Medicine. 3rd ed. New York, Oxford University Press, 1999.
  10. Havsteen B. H. The biochemistry and medical significance of the flavonoids. Pharmacol. Therap., 2002, vol. 96, no. 2–3, pp. 67–202. https://doi.org/10.1016/S0163-7258(02)00298-X
  11. Ibrahim H. M. M, El-seedy Y. Y, Gomaa N. A. Cytokine Response and Oxidative Stress Status in Dairy Cows with Acute Clinical Mastitis. J. Dairy Vet. Anim. Res., 2016, vol. 3, no 1, 00064. https://doi.org/10.15406/jdvar.2016.03.00064
  12. Jakovleva L. V., Avdeeva I. I. Tratment of experimental proctytis by suposytors “Proprofen”. Clinical Pharmacia, 2000, vol. 4, no. 2, pp 46–50. (in Russian)
  13. Jánosi S., Kulcsár M., Kóródi P., Kátai L., Reiczigel J. Energy imbalance related predisposition to mastitis in group-fed high-producing postpartum dairy cows. Acta Vet. Hung., 2003, vol. 51, no. 3, pp. 409–424. https://doi.org/10.1556/AVet.51.2003.3.14
  14. Jin L., Yan S. M., Shi B. L., Bao H. Y., Gong J. Effects of vitamin A on the milk performance, antioxidant functions and immune functions of dairy cows. Animal Feed Science and Technology, 2014, vol. 192, pp. 15–23. https://doi.org/10.1016/j.anifeedsci.2014.03.003
  15. Jóźwik A., Krzyżewski J., Strzałkowska N., Poławska E., Bagnicka E. Relations between the oxidative status, mastitis, milk quality and disorders of reproductive functions in dairy cows. A review. Animal Science Papers and Reports, 2012, vol. 30, no. 4, pp. 297–307.
  16. Jóźwik A., Śliwa-Jóźwik A., Strzałkowska N., Krzyżewski J., Kołątaj A. Relationship between somatic cell count, level of GSH, milk yield and its chemical composition. Medycyna Weterynaryjna, 2004, vol. 60, no. 11, pp. 1215–1217.
  17. Jóźwik A., Strzałkowska N., Bagnicka E., Grzybek W., Krzyżewski J., Poławska E., Kolataj A., Horbańczuk J. O. Relationship between milk yield, stage of lactation and some blood serum metabolic parameters of dairy cows. Czech Journal of Animal Science, 2012b, vol. 57, no. 8, pp. 353–360. https://doi.org/10.17221/6270-CJAS
  18. Jóźwik A., Strzałkowska N., Bagnicka E., Łagodziński Z., Pyzel B., Chyliński Jóźwik A. Status oksydacyjny wysokoprodukcyjnych krów mlecznych w zależności od wydajności, stadium laktacji i liczby komórek somatycznych w mleku. (Oxidative status in highly productive dairy cows as related to milk yield, lactation stage and Somatic Cell Count. Prace i Materiały Zootechniczne. Monografie i Rozprawy, 2010, vol. 23, pp. 7–111. (in Polish)
  19. Kamushnikow V. S. Handbook in the clinical and biochemical investigations and laboratory diagnostic. Moscow, Medpressinform, 2004, 820 p. (in Russian)
  20. Khismatulina N. Z. Apitherapy. Perm, Mobile, 200, pp. 49–67. (in Russian)
  21. Kizil O., Akar Y., Saat N., Kizil M., Yuksel M. The plasma lipid peroxidation intensity (MDA) and chain- breaking antioxidant concentrations in the cows with clinic or subclinic mastitis. Revue Méd. Vét., 2007, vol. 158, no. 11, pp. 529–533.
  22. Kohen R., Nyska A. Oxidation of biological systems: oxidative stress phenomena, antioxidants, redox reactions, and methods for their quantification. Toxicol. Pathol., 2002, vol. 30, pp. 620–650. https://doi.org/10.1080/01926230290166724
  23. Koroliuk M. A., Ivanova L. I., Maĭorova I. G., Tokarev V. E. A method of determining catalase activity. Lab. Work, 1988, vol. 1, pp. 16–19. (in Russian)
  24. Kostiuk V. A., Potapovich A. I., Kovaleva Zh. V. A simple and sensitive method of determination of superoxide dismutase activity based on the reaction of quercetin oxidation. Questions of Med. Chem., 1990, vol. 36, no. 2, pp. 88–91. (in Russian)
  25. Kovalyova O. O., Tikhonov O. I. Prospects for the creation of combined veterinary drugs for the treatment of endometritis in cows. Actual problems of modern medicine technology and extemporal formulation, 2007, vol. 1, pp. 386–387. (in Russian)
  26. Levine R. L., Garland D., Oliver C. N., Amici A., Climent I., Lenz A. G., Ahn B. W., Shaltiel S., Stadtman E. R. Determination of carbonyl content in oxidatively modified proteins. Methods Enzymol., 1990, vol. 186, pp. 464–478. https://doi.org/10.1016/0076-6879(90)86141-H
  27. Lykkesfeldt J., Svendsen O. Oxidants and antioxidants in disease: Oxidative stress in farm animals. Vet. J., 2007, vol. 173, pp. 502–511. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2006.06.005
  28. Maddox J. F., Aherne K. M., Reddy C. C., Sordillo L. M. Increased neutrophil adherence and adhesion molecule mRNA expression in endothelial cells during selenium deficiency. J. Leukoc. Biol., 1999, vol. 65, no. 5, pp. 658–664. https://doi.org/10.1002/jlb.65.5.658
  29. Marnett L. J. Lipid peroxidation-DNA damage by malondialdehyde. Mutat Res, 1999, vol. 424, no. 1–2, pp. 83–95. https://doi.org/10.1016/S0027-5107(99)00010-X
  30. Matolienec O. M. Age features of antioxidant and immune systems in animals with cadmium intoxication and their correction with antioxidants and enterosorbents. Phd of medical sciences thesis, Ternopil State Medical Academy named after I. Gorbachevsky, 2000. (in Ukrainian)
  31. Miller J. K., Brzezinska-Slebodzinska E., Madsen F. C. Oxidative stress, antioxidants, and animal function. J. Dairy Sci., 1993, vol. 76, no. 9, pp. 2812–2823. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(93)77620-1
  32. Mironchik V. The method of measurement of lipid hydroperoxides in biological material. Official Buletin, 1984, vol. 13, p. 2.
  33. Moin V. A simple and specific method for determining glutathione peroxidase activity in erythrocytes. Lab. Work, 1986, vol. 12, pp. 724–727. (in Russian)
  34. Nielsen F., Mikkelsen B. B., Nielsen J. B., Andersen H. L., Grandjean P. Plasma malondialdehyde as a biomarker for oxidative stress: reference interval and effects of life style factors. Clin. Chem., 1997, vol. 43, no. 7, pp. 1209–1214.
  35. Omarow Sh. M. Apitherapy: the products of apiculture in the world of medicine. Rostov-on-Don, Phoenix, 2009, pp. 78–95. (in Russian)
  36. Ranjan R., Swarup D., Naresh R., Patra R. C. Enhanced erythrocytic lipid peroxides and reduced plasma ascorbic acid, and alteration in blood trace elements level in dairy cows with mastitis. Vet. Res. Commun., 2005, vol. 29, pp. 27–34. https://doi.org/10.1023/B:VERC.0000046740.59694.5d
  37. Santos J. E., Cerri R. L., Ballou M. A., Higginbotham G. E., Kirk J. H. Effect of timing of first clinical mastitis occurrence on lactational and reproductive performance of Holstein dairy cows. Anim Reprod Sci., 2004, vol. 801, no. 2, pp. 31–45. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(03)00133-7
  38. Sawa A., Neja W., Bogucki M. Relationships between cytological quality and composition of milk and the effect of some environmental factors on the frequency of recurrent mastitis in cows. Journal of Central European Agriculture, 2008, vol. 8, pp. 295–300.
  39. Seegers H., Fourichon C., Beaudeau F. Production effects related to mastitis and mastitis economics in dairy cattle herds. Vet. Res., 2003, vol. 34, no. 5, pp. 475–479. https://doi.org/10.1051/vetres:2003027
  40. Sharma N., Mukherjee R., Ingale S. L., Jadhav R. K. Therapeutic and anti-oxidant activity of vitamin E and selenium in bovine Staphylococcal mastitis. Indian J. Vet. Res., 2010, vol. 19, no 1, pp. 25–31.
  41. Shtapenko O., Matiukha I., Hevkan I., Tkachenko H. The influence of trace elements in liposomal compounds on oxidative stress markers in the reproductive organs of female rabbits. Słupskie Prace Biologiczne, 2015, vol. 12, pp. 173–186.
  42. Siems W. G., Grune T., Esterbauer H. 4-Hydroxynonenal formation during ischemia and reperfusion of rat small-intestine. Life Sci., 1995, vol. 57, pp. 785–789. https://doi.org/10.1016/0024-3205(95)02006-5
  43. Sobko G. M., Broda N. A., Vishchur O. I., Kurtiak B. M. Influence of “Antymast” on the system of antioxidant defense of cows with subclinical form of mastitis. Scientific bulletin of LNUVMBT named after S. Z. Gzhytsky, 2016, vol. 18, no. 65, pp. 158–163. (in Ukrainian)
  44. Sordillo L. M., Aitken S. L. Impact of oxidative stress on the health and immune function of dairy cattle. Vet. Immunol. Immunopathol., 2009, vol. 128, no. 1–3, pp. 104–109. https://doi.org/10.1016/j.vetimm.2008.10.305
  45. Stadtman E. R. Role of oxidant species in aging. Curr. Med. Chem., 2004, vol. 11, pp. 1105–1112. https://doi.org/10.2174/0929867043365341
  46. Strzałkowska N., Jóźwik A., Bagnicka E., Krzyżewski J., Horbańczuk J. O. Studies upon genetic and environmental factors affecting the cholesterol content of cow milk. I. Relationship between the polymorphic form of beta-lactoglobulin, somatic cell count, cow age, stage of lactation and cholesterol content of milk. Animal Science Papers and Reports, 2009a, vol. 27, no. 2, pp. 95–103.
  47. Strzałkowska N., Jóźwik A., Bagnicka E., Krzyżewski J., Horbańczuk J. O. Studies upon genetic and environmental factors affecting the cholesterol content of cow milk. II. Effect of silage type offered. Animal Science Papers and Reports, 2009, vol. 27, no. 3, pp. 199–206.
  48. Strzałkowska N., Jóźwik A., Bagnicka E., Krzyżewski J., Horbańczuk K., Pyzel B., Słoniewska D., Horbańczuk J. O. The concentration of free fatty acids in goat milk as related to the stage of lactation, age and somatic cell count. Animal Science Papers and Reports, 2010, vol. 28, no. 4, pp. 389–395.
  49. Thannickal V. J., Fanburg B. L. Reactive oxygen species in cell signaling. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol., 2000, vol. 279, no. 6, pp. 1005–1028. https://doi.org/10.1152/ajplung.2000.279.6.L1005
  50. Tykhonow A. I., Tykhonowa S. A., Jarnukh T. G. Flower pollen in the pharmacy and medicine. Kharkiv, NPhU, 2006, 308 p. (in Russian)
  51. Tykhonow A. I., Tykhonowa S. A., Jarnukh T. G. Natural honey in the medicine and pharmacy (origin, properties, usage, medical drugs). Kharkiv, Original, 2010, 263 p. (in Russian)
  52. Valko M., Rhodes C. J., Moncol J., Izakovic M., Mazur M. Free radicals, metals and antioxidants in oxidative stress-induced cancer. Chem. Biol. Interact., 2006, vol. 160, pp. 1–40. https://doi.org/10.1016/j.cbi.2005.12.009
  53. Wang M. Y., Dhingra K., Hittelman W. N., Liehr J. G., de Andrade M., Li D. H. Lipid peroxidation-induced putative malondialdehyde — DNA adducts in human breast tissues. Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev., 1996, vol. 5, pp. 705–710.
  54. Weiss W. P. Antioxidant nutrients, cow health, and milk quality. Pennsylvania State Dairy Cattle Nutrition, Workshop, 2005, pp. 11–18.
  55. Yakovleva L. V, Avdeyeva I. I. Treatment of experimental proctitis with suppositories “Propofen”. Clinical Pharmacy, 2000, vol. 4, no. 2, 46–50. (in Russian)
  56. Zhao X., Lacasse P. Mammary tissue damage during bovine mastitis: Causes and control. J. Anim. Sci., 2008, vol. 86, no. 1, 57–65. https://doi.org/10.2527/jas.2007-0302

скачати повний текст статті в форматі PDF

РЕКОМЕНДАЦІЇ ДЛЯ АВТОРІВ
ПУБЛІКАЦІЙНА ЕТИКА
ПРОЦЕС РЕЦЕНЗУВАННЯ
ПОЛІТИКА ЩОДО ПЛАГІАТУ
ПОЛІТИКА ВІДКРИТОГО ДОСТУПУ
КОНФІДЕЦІЙНІСТЬ
АВТОРСЬКІ ПРАВА ТА ЛІЦЕНЗУВАННЯ
АРХІВ

ICLOGO

DOAJ logo colour

gslogo

cr

cabi

nbuv

ouci0

WorldCat Logo

oa

Search