Вплив препарату «Біофосфомаг» на біохімічні показники крові за умов індукованого оксидативного стресу у щурів

Р. І. Пальонко

Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

Національний університет біоресурсів і природокористування України,
вул. Героїв Оборони, 15, м. Київ, 03041, Україна

---

Метою дослідження було вивчення впливу препарату «Біофосфомаг» на біохімічні показники крові за умов індукованого оксидативного стресу у щурів. В експерименті використали 24 тварини-аналоги масою 200±20 г. Тварин розділили на 4 групи по 6 тварин в кожній та утримували на стандартному раціоні з доступом до води ad libitum. Перша група слугувала інтактним контролем без оксидативного стресу і його корекції; друга — контрольна з індукованим оксидативним стресом і без його корекції. Третя група внутрішньошлунково отримувала 1% розчин сульфату магнію. Тваринам четвертої групи вводили «Біофосфомаг» (комбінований препарат магнію і фосфору на основі казеїну) у дозі, еквівалентній магнію сульфату за магнієм. Оксидативний стрес індукували одноразовим внутрішньошлунковим введенням парацетамолу. Результати аналізу сироватки крові продемонстрували зниження активності ензимів: лужної фосфатази, аланінамінотрансферази, α-амілази, аспартатамінотрансферази, лактатдегідрогенази, концентрації глюкози і ТБК-активних сполук (P<0,05) в сироватці крові після застосування препарату, а також збільшення вмісту магнію й активності каталази. Отримані дані вказують на вищу біодоступність магнію у складі препарату «Біофосфомаг», ніж у складі сульфату магнію, що зумовлює вираженішу гепатопротекторну дію за умов індукованого оксидативного ураження печінки. Вони можуть бути обґрунтуванням для впровадження застосування препарату «Біофосфомаг» у корекції патологічних процесів, які супроводжуються оксидативним стресом, або як джерела магнію з високою біодоступністю.

Ключові слова: оксидативний стрес, активні форми кисню, відновлений глутатіон, антиоксидантний захист, хелат

Завантажити повний текст статті у форматі PDF

---

Як цитувати цю статтю:

---

1. Bahrami S, Shahriari A, Tavalla M, Azadmanesh S, Hamidinejat H. Blood levels of oxidant/antioxidant parameters in rats infected with Toxoplasma gondii. Med. Cell. Longev. 2016; 2016: 8045969. DOI: 10.1155/2016/8045969.
2. Barnes PJ. Oxidative stress-based therapeutics in COPD. Redox Biol. 2020; 33: 101544. DOI: 10.1016/j.redox.2020.101544.
3. Blair IA. Endogenous glutathione adducts. Drug Metab. 2006; 7 (8): 853–872. DOI: 10.2174/138920006779010601.
4. Canayakin D, Bayir Y, Baygutalp NK, Karaoglan ES, Atmaca HT, Ozgeris FBK, Keles MS, Halici Z. Paracetamol-induced nephrotoxicity and oxidative stress in rats: The protective role of Nigella sativa. Biol. 2016; 54 (10): 2082–2091. DOI: 10.3109/13880209.2016.1145701.
5. Chen Y, Xiong S, Zhao F, Lu X, Wu B, Yang B. Effect of magnesium on reducing the UV-induced oxidative damage in marrow mesenchymal stem cells. Biomed. Mat. Res. A. 2019; 107 (6): 1253–1263. DOI: 10.1002/jbm.a.36634.
6. Dizdaroglu M, Jaruga P, Birincioglu M, Rodriguez H. Free radical-induced damage to DNA: Mechanisms and measurement. Free Rad. Biol. Med. 2002; 32 (11): 1102–1115. DOI: 10.1016/S0891-5849(02)00826-2.
7. Erhirhie EO, Ihekwereme CP, Ilodigwe EE. Advances in acute toxicity testing: strengths, weaknesses and regulatory acceptance. Toxicol. 2018; 11 (1): 5–12. DOI: 10.2478/intox-2018-0001.
8. Gröber U, Schmidt J, Kisters K. Magnesium in prevention and therapy. 2015; 7 (9): 8199–8226. DOI: 10.3390/nu7095388.
9. Guo H, Sun J, Li D, Hu Y, Yu X, Hua H, Jing X, Chen F, Jia Z, Xu J. Shikonin attenuates acetaminophen-induced acute liver injury via inhibition of oxidative stress and inflammation. Pharmacotherapy. 2019; 112: 108704. DOI: 10.1016/j.biopha.2019.108704.
10. Hadwan MH, Abed HN. Data supporting the spectrophotometric method for the estimation of catalase activity. Data Brief. 2015; 6: 194–199. DOI: 10.1016/j.dib.2015.12.012.
11. Hax LT, Rincón JAA, Schneider A, Pegoraro LMC, Franco Collares L, Alves Pereira R, Pradieé J, Del Pino FAB, Nunes Corrêa M. Effect of butafosfan supplementation during oocyte maturation on bovine embryo development. Zygote. 2019; 27 (5): 321–328. DOI: 10.1017/S0967199419000327.
12. Hybertson BM, Gao B, Bose SK, McCord JM. Oxidative stress in health and disease: The therapeutic potential of Nrf2 activation. Asp. Med. 2011; 32 (4–6): 234–246. DOI: 10.1016/j.mam.2011.10.006.
13. Kaliaperumal R, Venkatachalam R, Nagarajan P, Sabapathy SK. Association of serum magnesium with oxidative stress in the pathogenesis of diabetic cataract. Trace Element Res. 2021; 199 (8): 2869–2873. DOI: 10.1007/s12011-020-02429-9.
14. Kalsi SS, Wood DM, Waring WS, Dargan PI. Does cytochrome P450 liver isoenzyme induction increase the risk of liver toxicity after paracetamol overdose? Open Acc. Emerg. Med. 2011; 2011 (3): 69–76. DOI: 10.2147/OAEM.S24962.
15. Kreipe L, Deniz A, Bruckmaier RM, van Dorland HA. First report about the mode of action of combined butafosfan and cyanocobalamin on hepatic metabolism in nonketotic early lactating cows. Dairy Sci. 2011; 94 (10): 4904–4914. DOI: 10.3168/jds.2010-4080.
16. Kurhaluk N, Tkachenko H, Partyka T. Photoperiod-induced alterations in biomarkers of oxidative stress in rats of different ages and individual physiological reactivity. Bìol. Tvarin. 2022; 24 (1): 11–18. DOI: 10.15407/animbiol24.01.011.
17. Kuzniar A, Mitura P, Kurys P, Szymonik-Lesiuk S, Florianczyk B, Stryjecka-Zimmer M. The influence of hypomagnesemia on erythrocyte antioxidant enzyme defence system in mice. Biometals. 2003; 16 (2): 349–357. DOI: 10.1023/A:1020632505289.
18. Lv Y, Zhang B, Xing G, Wang F, Hu Z. Protective effect of naringenin against acetaminophen-induced acute liver injury in metallothionein (MT)-null mice. Food Funct. 2013; 4 (2): 297–302. DOI: 10.1039/C2FO30213F.
19. Martin H, Richert L, Berthelot A. Magnesium deficiency induces apoptosis in primary cultures of rat hepatocytes. Nutr. 2003; 133 (8): 2505–2511. DOI: 10.1093/jn/133.8.2505.
20. Melov S. Animal models of oxidative stress, aging, and therapeutic antioxidant interventions. J. Biochem. Cell Biol. 2002; 34 (11): 1395–1400. DOI: 10.1016/S1357-2725(02)00086-9.
21. Mishra P, Pandey CM, Singh U, Keshri A, Sabaretnam M. Selection of appropriate statistical methods for data analysis. Card. Anaest. 2019; 22 (3): 297–301. DOI: 10.4103/aca.ACA_248_18.
22. Morais JBS, Severo JS, Santos LR, de Sousa Melo SR, de Oliveira Santos R, de Oliveira ARS, Cruz KJC, do Nascimento Marreiro D. Role of magnesium in oxidative stress in individuals with obesity. Trace El. Res. 2017; 176 (1): 20–26. DOI: 10.1007/s12011-016-0793-1.
23. Nagababu E, Rifkind JM, Boindala S, Nakka L. Assessment of antioxidant activity of eugenol in vitro and in vivo. In: Methods in molecular biology. 2010; 610: 165–180. DOI: 10.1007/978-1-60327-029-8_10.
24. Nishikawa T, Bellance N, Damm A, Bing H, Zhu Z, Handa K, Yovchev MI, Sehgal V, Moss TJ, Oertel M, Ram PT, Pipinos II, Soto-Gutierrez A, Fox IJ, Nagrath D. A switch in the source of ATP production and a loss in capacity to perform glycolysis are hallmarks of hepatocyte failure in advance liver disease. Hepatol. 2014; 60 (6): 1203–1211. DOI: 10.1016/j.jhep.2014.02.014.
25. Nolfi-Donegan D, Braganza A, Shiva S. Mitochondrial electron transport chain: Oxidative phosphorylation, oxidant production, and methods of measurement. Redox Biol. 2020; 37: 101674. DOI: 10.1016/j.redox.2020.101674.
26. Palonko RI, Kalachniuk LH, Arnauta OV, Mykhailiuk MM, Arnauta NV, Pavlyuk OV, Fedyshyn PM. The method of the “Biophosphomag” veterinary drug producing. Patent UA for utility model no. U202105112 from 13.01.2022. Available at: https://sis.ukrpatent.org/uk/search/detail/1673135 (in Ukrainian)
27. Papackova Z, Heczkova M, Dankova H, Sticova E, Lodererova A, Bartonova L, Poruba M, Cahova M. Silymarin prevents acetaminophen-induced hepatotoxicity in mice. PloS One. 2018; 13 (1): 1–20. DOI: 10.1371/journal.pone.0191353.
28. Ratnam DV, Ankola DD, Bhardwaj V, Sahana DK, Ravi Kumar MNV. Role of antioxidants in prophylaxis and therapy: A pharmaceutical perspective. Contr. Release. 2006; 113 (3): 189–207. DOI: 10.1016/j.jconrel.2006.04.015.
29. Rezzani R, Franco C. Liver, Oxidative stress and metabolic syndromes. Nutrients. 2021; 13 (2): 301. DOI: 10.3390/nu13020301.
30. Rui L. Energy metabolism in the liver. Physiol. 2014; 4 (1): 177–197. DOI: 10.1002/cphy.c130024.
31. Sies H. Oxidative stress: Oxidants and antioxidants. Physiol. 1997; 82 (2): 291–295. DOI: 10.1113/expphysiol.1997.sp004024.
32. Simeonova R, Kondeva-Burdina M, Vitcheva V, Mitcheva M. Some in vitro/in vivo chemically-induced experimental models of liver oxidative stress in rats. BioMed Res. Int. 2014; 2014: 706302. DOI: 10.1155/2014/706302.
33. Tarallo A, Damiano C, Strollo S, Minopoli N, Indrieri A, Polishchuk E, Zappa F, Nusco E, Fecarotta S, Porto C, Coletta M, Iacono R, Moracci M, Polishchuk R, Medina DL, Imbimbo P, Monti DM, De Matteis MA, Parenti G. Correction of oxidative stress enhances enzyme replacement therapy in Pompe disease. EMBO Mol. Med. 2021; 13 (11): e14434. DOI: 10.15252/emmm.202114434.
34. Yan M, Huo Y, Yin S, Hu H. Mechanisms of acetaminophen-induced liver injury and its implications for therapeutic interventions. Redox Biol. 2018; 17: 274–283. DOI: 10.1016/j.redox.2018.04.019.