Завантажити повний текст у PDF

Bìol. Tvarin. 2023; 25 (3): 19–22.
https://doi.org/10.15407/animbiol25.03.019
Received 26.05.2023 ▪ Revision 23.07.2023 ▪ Accepted 25.09.2023 ▪ Published online 02.10.2023

---

Репродуктивні характеристики цапів зааненської та альпійської порід

А. О. Богданюк^1,2, В. В. Гаркавий³, М. П. Петрушко¹

Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

¹Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України, вул. Переяславська, 23, м. Харків, 61016, Україна
²ТОВ «Інститут Сучасних Ветеринарних Технологій», вул. Шевченка, 27, с. Черевки, Броварський р-н, Київська обл., 07624, Україна
³ФГ «Тетяна 2011», вул. Шевченка, 1М, с. Черевки, Броварський р-н, Київська обл., Україна, 07624

---

Внутрішньовидова генетична різниця між породами може впливати не тільки на характеристики продуктивності — наприклад, на кількість та якість надою, але й на здоров’я тварин, зокрема їхню фертильність. Мета дослідження — порівняти репродуктивні характеристики зааненської та альпійської порід. Концентрацію та рухливість сперматозоїдів визначали за допомогою світлової мікроскопії; життєздатність — у забарвлених еозин-нігрозином; морфологічні параметри — методом Spermac Stain, визначення рівня фрагментації ДНК проводили з використанням набору Halosperm. Штучне осіменіння кіз проводили нативним еякулятом в еструсі самиць. Статистичну обробку даних виконували у програмі Graph Pad Prism. Встановлено, що цапи альпійської породи мали статистично більший об’єм еякуляту, концентрацію сперматозоїдів, життєздатність та рухливість (P<0,05). Не було виявлено статистично вірогідної різниці (P≥0,05) між породами у кількості сперматозоїдів з нормальними морфологічними характеристиками та рівнем фрагментації ДНК сперматозоїдів. Кріобіологічні характеристики сперматозоїдів цапів зааненської породи мали тенденцію до більшої кріорезистентності. Після штучного осіменіння кіз частота вагітностей у самок зааненської породи склала 61,8%, що вдвічі перевищувало частоту настання вагітності у кіз альпійської породи — 28,8% (P<0,05). Репродуктивні характеристики сперматозоїдів цапів зааненської та альпійської порід статистично відрізняються. Незважаючи на кращі характеристики еякуляту, частота настання вагітності самиць альпійської породи після штучного осіменіння була вірогідно нижчою, ніж зааненської породи. Для успішного впровадження програм розмноження та ефективного використання біотехнологій у тваринництві важливим є комплексне врахування внутрішньовидової різниці основних репродуктивних характеристик.

Ключові слова: сперматозоїди, репродуктивні характеристики, кріоконсервування, вагітність, кози, цапи, зааненська порода, альпійська порода

---

1. Amills M, Capote J, Tosser-Klopp G. Goat domestication and breeding: a jigsaw of historical, biological and molecular data with missing pieces. Genet. 2017; 48 (6): 631–644. DOI: 10.1111/age.12598.
2. Bogdaniuk A, Garkavii V, Petrushko M. Seasonal variability in cryoresistance of Saanen goats spermatozoa and reproductive characteristics. Cryobiol. Cryomed. 2022; 32 (1): 34–43. DOI: 10.15407/cryo32.01.034. (in Ukrainian)
3. Bogdaniuk AO, Yurchuk TO, Petrushko MP. Seasonal differences in sperm characteristics and the level of DNA fragmentation in fresh and cryopreserved sperm of Saanen goats. Genet. 2022; 56 (5): 410–416. DOI: 10.3103/S0095452722050036.
4. Desire S, Mucha S, Coffey M, Mrode R, Broadbent J, Conington J. Pseudopregnancy and aseasonal breeding in dairy goats: genetic basis of fertility and impact on lifetime productivity. Animal. 2018; 12 (9): 1799–1806. DOI: 10.1017/S1751731117003056.
5. Harris DL, Newman S. Breeding for profit: synergism between genetic improvement and livestock production (a review). Anim. Sci. 1994; 72 (8): 2178–2200. DOI: 10.2527/1994.7282178x.
6. Karagiannidis A, Varsakeli S, Karatzas G. Characteristics and seasonal variations in the semen of Alpine, Saanen and Damascus goat bucks born and raised in Greece. Theriogenol. 2000; 53 (6): 1285–1293. DOI: 10.1016/S0093-691X(00)00272-7.
7. Kopeika EF, Petrushko MP, Piniaiev VI, Yurchuk TO, Pavlovich OV, Mikson KB, Butskyi KI, Hapon HO, Puhovkin AY. Cryopreservation of reproductive cells and embryos of laboratory, agricultural and wild animals. Cryobiol. Cryomed. 2019; 29 (1): 3–18. DOI: 10.15407/cryo29.01.003.
8. Lim DH, Mayakrishnan V, Lee HJ, Ki KS, Kim TI, Kim Y. A comparative study on milk composition of Jersey and Holstein dairy cows during the early lactation. Anim. Sci. Technol. 2020; 62 (4): 565–576. DOI: 10.5187/jast.2020.62.4.565.
9. Lopes Júnior ES, Cruz JF, Teixeira DIA, Lima Verde JB, Paula NRO, Rondina D, Freitas VJF. Pseudopregnancy in Saanen goats (Capra hircus) raised in Northeast Brazil. Res. Commun. 2004; 28 (2): 119–125. DOI: 10.1023/B:VERC.0000012112.79820.e0.
10. Luo J, Wang W, Sun S. Research advances in reproduction for dairy goats. Australas. J. Anim. Sci. 2019; 32 (8): 1284–1295. DOI: 10.5713/ajas.19.0486.
11. Lv C, Wu G, Hong Q, Quan G. Spermatozoa cryopreservation: state of art and future in small ruminants. Biobank. 2019; 17 (2): 171–182. DOI: 10.1089/bio.2018.0113.
12. Mohammed Muayad TA, Haniza MZH, Husni I. Reproductive performance of different goat breeds in Malaysia. Indian J. Anim. Res. 2017; 53 (1): 24–27. DOI: 10.18805/ijar.v0iOF.7002.
13. Pirova L, Syvyk T. Technology of production of small ruminants products: methodical recommendations and workbook for practical classes of students of the Faculty of Biology and Technology of full-time and part-time forms of study of the Bachelor educational degree in speciality 204 “Technology of production and processing of livestock products” under the credit transfer system of educational process organization. Bila Tserkva, 2018: 58–59. Available at: https://rep.btsau.edu.ua/handle/BNAU/1389. (in Ukrainian)
14. Prieto-Martínez N, Vilagran I, Morató R, Rivera del Álamo MM, Rodríguez-Gil JE, Bonet S, Yeste M. Relationship of aquaporins 3 (AQP3), 7 (AQP7), and 11 (AQP11) with boar sperm resilience to withstand freeze-thawing procedures. Andrology. 2017; 5 (6): 1153–1164. DOI: 10.1111/andr.12410.
15. Rhone JA, Waldron DF, Herring AD. Performance of Boer-Spanish and Spanish goats in Texas I: Body weights, fertility, prolificacy, and number of kids weaned. Anim. Sci. 2013; 91 (10): 4679–4683. DOI: 10.2527/jas.2013-6227.
16. Sharan MM, Salyha YT. The status and prospects of reproductive biotechnology application to increase productivity in cattle breeding. Bìol. Tvarin. 2022; 24 (3): 44–50. DOI: 10.15407/animbiol24.03.044. (in Ukrainian)
17. Shelton M. Reproduction and breeding of goats. Dairy Sci. 1978; 61 (7): 994–1010. DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(78)83680-7.
18. Yánez-Ortiz I, Catalán J, Rodríguez-Gil JE, Miró J, Yeste M. Advances in sperm cryopreservation in farm animals: Cattle, horse, pig and sheep. Reprod. Sci. 2022; 246: 106904. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2021.106904.
19. Zaghloul HK, El-Maghraby MM, El badawy AA, Yousif AIA. Characteristics, yield, flow cytometer, DNA fragmentation, and comet assay parameters of goat spermatozoa in semen of Zaraibi and Baladi bucks at young and old ages. Anim. Poultry Prod. 2021; 12 (9): 305–314. DOI: 10.21608/jappmu.2021.95942.1021.
20. Zarazaga LA, Guzmán JL, Domínguez C, Pérez MC, Prieto R. Effects of season and feeding level on reproductive activity and semen quality in Payoya buck goats. Theriogenol. 2009; 71 (8): 1316–1325. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2009.01.007.
21. Zi XD, Hu L, Lu JY, Liu S, Zheng YC. Comparison of the sequences and expression levels of genes related to follicular development and atresia between prolific and nonprolific goat breeds. Vet. Med. Sci. 2020; 6 (2): 187–195. DOI: 10.1002/vms3.225.