Bìol. Tvarin. 2021; 23 (4): 43–48.
Received 07.10.2021 ▪ Accepted 03.12.2021 ▪ Published online 29.12.2021

Біохімічні маркери функціонального стану гепатобіліарної системи щурів за дії лазерного опромінення та ω-3 поліненасичених жирних кислот

О. В. Кеца, І. Ю. Капітанчук

Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

Чернівецький національний університет імені Юрія Федьковича,
вул. Коцюбинського 2, м. Чернівці, 58012, Україна

У роботі досліджено маркери функціонального стану органів гепатобіліарної системи — ензимні активності аланінамінотрансферази (АЛТ), аспартатамінотрансферази (АСТ), γ-глутамілтрансферази (ГГТ), рівні загального та прямого білірубіну, значення тимолової проби у плазмі крові щурів за дії лазерного опромінення у ближньому інфрачервоному діапазоні довжин хвиль та введення ω-3 ПНЖК. Встановлено, що дія лазерного діода довжиною хвилі 650 нм потужністю 50 мВт через шкіру в ділянку черевної порожнини призводить до підвищення у плазмі крові активностей амінотрансфераз та ГГТ поряд із підвищенням рівня загального і прямого білірубіну та показника тимолової проби. Показано, що ω-3 поліненасичені жирні кислоти (ПНЖК) проявляють коригувальний ефект на функціональний стан печінки, який залежить від схеми їхнього введення. Найвищий гепатопротекторний ефект досліджуваних есенціальних нутрієнтів виявлений за умов їх попереднього введення до дії лазерного опромінення, про що свідчить зниження гiперферментемії АЛТ, АСТ, ГГТ, зниження рівня загального і прямого білірубіну та показника тимолової проби у плазмі крові. Введення ω-3 ПНЖК після закінчення дії лазерного діода не призводить до змін маркерів функціонального стану печінки в плазмі крові щурів порівняно з опроміненими тваринами, яким не вводили досліджуваних ліпофільних нутрієнтів.

Ключові слова: щури, печінка, аланінамінотрансфераза, аспартатамінотрансфераза, γ-глутамілтрансфераза, білірубін, лазерне опромінення, ω-3 поліненасичені жирні кислоти

  1. Ayee MAA, Bunker BC, De Groot JL. Membrane modulatory effects of omega-3 fatty acids: Analysis of molecular level interactions. Top. Membr. 2020; 86: 57–81. DOI: 10.1016/bs.ctm.2020.08.001.
  2. Bissig KD, Han W, Barzi M, Kovalchuk N, Ding L, Fan X, Pankowicz FP, Zhang QY, Ding X. P450-humanized and human liver chimeric mouse models for studying xenobiotic metabolism and toxicity. Drug Metab. Dispos. 2018; 46 (11): 1734–1744. DOI: 10.1124/dmd.118.083303.
  3. Chen L, Chen R, Kemper S, Cong M, You H, Brigstock DR. Therapeutic effects of serum extracellular vesicles in liver fibrosis. Extracell. Vesicles. 2018; 7 (1): 1461505. DOI: 10.1080/20013078.2018.1461505.
  4. De Avelar CR, Pereira EM, de Farias Costa PR, de Jesus RP, de Oliveira LPM. Effect of silymarin on biochemical indicators in patients with liver disease: Systematic review with meta-analysis. World J. Gastroenterol. 2017; 23 (27): 5004–5017. DOI: 10.3748/wjg.v23.i27.5004.
  5. Jampa-Ngern S, Viravaidya-Pasuwat K, Suvanasuthi S, Khantachawana A. Effect of laser diode light irradiation on growth capability of human hair follicle dermal papilla cells. 39th Int. Conf. IEEE Eng. Med. Biol. Soc. 2017: 3592–3595. DOI: 10.1109/EMBC.2017.8037634.
  6. Kunkel HG, Hoagland Mechanism and significance of the thymol turbidity test for liver disease. J. Clin. Invest. 1947; 26 (6): 1060–1071. DOI: 10.1172/JCI101898.
  7. Kwo PY, Cohen SM, Lim JK. ACG clinical guideline: evaluation of abnormal liver chemistries. J. Gastroenterol. 2017; 112 (1): 18–35. DOI: 10.1038/ajg.2016.517.
  8. Lozano-Paniagua D, Parrón T, Alarcón R, Requena M, López-Guarnido O, Lacasaña M, Hernández AF. Evaluation of conventional and non-conventional biomarkers of liver toxicity in greenhouse workers occupationally exposed to pesticides. Food Chem. Toxicol. 2021; 151: 112127. DOI: 10.1016/j.fct.2021.112127.
  9. Michalopoulos GK, Bhushan B. Liver regeneration: biological and pathological mechanisms and implications. Rev. Gastroenterol. Hepatol. 2021; 18 (1): 40–55. DOI: 10.1038/s41575-020-0342-4.
  10. Moss DW, Henderson AR. Clinical enzymology. In: Burtis CA, Ashwood ER, eds. Tietz Textbook of Clinical Chemistry. 3rd Philadelphia, W.B Saunders Company, 1999: 617–721.
  11. Muster B, Rapp A, Cardoso MC. Systematic analysis of DNA damage induction and DNA repair pathway activation by continuous wave visible light laser micro-irradiation. AIMS Genet. 2017; 4 (1): 47–68. DOI: 10.3934/genet.2017.1.47.
  12. Schumann G, Bonora R, Ceriotti F, Férard G, Ferrero CA, Franck PFH, Gella FJ, Hoelzel W, Jørgensen PJ, Kanno T, Kessner A, Klauke R, Kristiansen N, Lessinger JM, Linsinger TPJ, Misaki H, Panteghini M, Pauwels J, Schiele F, Schimmel HG. IFCC Primary reference procedures for the measurements of catalytic activity concentrations of enzymes at 37°C. Part 6. Reference procedure for the measurements of catalytic concentration of γ-glutamyltransferase. Chem. Lab Med. 2002; 40 (7): 734–738. DOI: 10.1515/CCLM.2002.126.
  13. Shahidi F, Ambigaipalan P. Omega-3 polyunsaturated fatty acids and their health benefits. Rev. Food Sci. Technol. 2018; 9: 345–381. DOI: 10.1146/annurev-food-111317-095850.
  14. Shobha R, Narayanan VS, Jagadish Pai BS, Jaishankar HP, Jijin MJ. Low-level laser therapy: A novel therapeutic approach to temporomandibular disorder — A randomized, double-blinded, placebo-controlled trial. Indian J. Dent. Res. 2017; 28 (4): 380–387. DOI: 10.4103/ijdr.IJDR_345_15.
  15. Shurygina IP, Zilov VG, Smekalkina LV, Naprienko MB, Safonov MI, Akulov SN. Effect of infrared low-intensity laser irradiation on lipid peroxidation under conditions of experimental circulatory hypoxia of visual analyzer. Exp. Biol. Med. 2020; 168 (5): 602–604. DOI: 10.1007/s10517-020-04760-6.
  16. Simmons NA. An automated method for serum bilirubin determination. Clin. Path. 1968; 21: 196–201. DOI: 10.1136/jcp.21.2.196.
  17. Sullivan EM, Pennington ER, Green WD, Beck MA, Brown DA, Shaikh SR. Mechanisms by which dietary fatty acids regulate mitochondrial structure-function in health and disease. Nutr. 2018; 9 (3): 247–262. DOI: 10.1093/advances/nmy007.
  18. Thomas L. Alanine aminotransferase (ALT), aspartate aminotransferase (AST). In: Clinical Laboratory Diagnostics. 1st Frankfurt: TH‑Books Verlagsgesellschaft, 1998: 55–65.

Search