Завантажити повний текст у PDF

Bìol. Tvarin. 2023; 25 (3): 36–41.
https://doi.org/10.15407/animbiol25.03.036
Received 15.07.2023 ▪ Revision 20.08.2023 ▪ Accepted 23.09.2023 ▪ Published online 02.10.2023

---

Патоморфологічні зміни нирок, печінки та біохімічні показники сироватки крові червоновухих прісноводних черепах (Trachemys scripta elegans) за парентерального введення гентаміцину

Р. С. Данкович, В. І. Чулюк

Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її., Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

Львівський національний університет ветеринарної медицини ти біотехнологій імені С. З. Ґжицького, вул. Пекарська, 50, м. Львів, 79010, Україна

---

Принципи лікування плазунів значно відрізняються від медикаментозної терапії у ссавців та птахів, що насамперед пов’язано з анатомічними та фізіологічними особливостями рептилій. Під час лікування інфекційних хвороб рептилій використовується гентаміцин, який має нефротоксичну дію. З метою вивчення впливу на організм плазунів гентаміцину проведено біохімічне дослідження сироватки крові з визначенням активності аспартатамінотрансферази та аланінамінотрансферази, концентрації сечовини та сечової кислоти, а також гістологічне та ультраструктурне дослідження нирок і печінки. Для дослідження сформовано дві дослідні групи червоновухих прісноводних черепах (Trachemys scripta elegans), яким кожні 48 годин у м’язи грудної кінцівки вводили гентаміцин в дозі 10 мг/кг. Тварин першої дослідної групи виводили з експерименту на 7-у добу, а тварин другої групи — на 14-у добу досліду. Внаслідок парентерального введення гентаміцину в черепах відзначали зростання концентрації сечової кислоти та сечовини, а також активності аспартатамінотрансферази та аланінамінотрансферази сироватки крові. В нирках виявили структурні зміни ниркових клубочків: альтеративні зміни подоцитів, а також дистрофічні та некротичні зміни епітелію ниркових канальців. Дегенеративні зміни нефроцитів супроводжувались розширенням канальців гладкої ендоплазматичної сітки, деструкцією крист мітохондрій, нагромадженням в цитоплазмі автофаголізосом, цитосом та лізосом. Також виявили ознаки апоптозу нефроцитів, з формуванням апоптичних тілець. За дослідження печінки реєстрували дистрофічні та некротичні зміни гепатоцитів, розширення та переповнення судин венозного русла.

Ключові слова: рептилії, гентаміцин, черепахи, нирки, печінка, сечовина, сечова кислота, АсАТ, АлАТ, патоморфологія

---

1. Garner MM, Jacobson ER. Noninfectious Diseases and Pathology of Reptiles. Volume 2. Boca Raton, CRC Press, 2021: 534 p. ISBN 9781498771580. DOI: 10.1201/9780429154317.
2. Glauert AM. Fixation, Dehydration and Embedding of Biological Specimens. Practical methods in electron microscopy. North-Holland, Elsevier, 1975: 256 p. ISBN 9780720442571.
3. Gumbar S, Bhardwaj S, Mehan S, Khan Z, Narula AS, Kalfin R, Tabrez S, Zughaibi TA, Wasi S. Renal mitochondrial restoration by gymnemic acid in gentamicin-mediated experimental nephrotoxicity: evidence from serum, kidney and histopathological alterations. Pharmacol. 2023; 4: 1–16 DOI: 10.3389/fphar.2023.1218506.
4. Haggag G, Hassan R. Main excretory end-products of protein and purine metabolism in lizards and snakes. Vergl. Physiol. 1968; 57: 423–427. DOI: 10.1007/BF00303065.
5. Halán M, Kottferová L, Račka K, Lam A. The amount of food ingested and its impact on the level of uric acid in the blood. Animals. 2022; 12 (21): 2959. DOI: 10.3390/ani12212959.
6. Horalsky LP, Khomych VT, Kononskyi OI. Basics of Histological Technique and Morphofunctional Research Methods in Normal and Pathological Conditions. Zhytomyr, Polissya Publ., 2015: 286 p. (in Ukrainian)
7. Kotsyumbas GI, Dankovych RS, Stronsryi YS, Shchebentovska OM, Zaitsev OO. Diseases of Reptiles. Lviv, Poster Publ., 2012: 240 p. (in Ukrainian)
8. Mader DR. Clinical Pathology of Reptiles. In: Campbell TW. Reptile Medicine and Surgery. Elsevier, 2006: 248–225. ISBN
9. Mader DR, Divers J. Current Therapy in Reptile Medicine and Surgery. Elsevier, 2014: 462 p. ISBN 978-1-4557-0893-2. DOI: 10.1016/C2010-0-67117-3.
10. Montali RJ, Bush M, Smeller JM. The pathology of nephrotoxicity of gentamicin in snakes. A model for reptilian gout. Vet. Pathol. 1979; 16 (1): 108–115. DOI: 10.1177/030098587901600111.
11. Origgi FC, Jacobson ER. Diseases of the respiratory tract of chelonians. Clin. North Am. Exot. Anim. Pract. 2000; 3 (2): 537–549. DOI: 10.1016/S1094-9194(17)30088-9.
12. Petrovska I, Salyha Y, Vudmaska I. Statistical Methods in Biological Research. An educational and methodological manual. Kyiv, Agrarian Science Publ., 2022: 172 p. (in Ukrainian)
13. Pincheira-Donoso D, Bauer AM, Meiri S, Uetz P. Global taxonomic diversity of living reptiles. PLoS ONE. 2013; 8 (3): e59741. DOI: 10.1371/journal.pone.0059741.
14. Randjelović P, Veljković S, Stojiljković N, Sokolović D, Ilić I. Gentamicin nephrotoxicity in animals: Current knowledge and future perspectives. EXCLI J. 2017; 24 (16): 388–399. DOI: 10.17179/excli2017-165.
15. Raphael B, Clark CH, Hudson R. Plasma concentration of gentamicin in turtles. Zoo Anim. Med. 1985; 16 (4): 136–139. DOI: 10.2307/20094769.
16. Reznikov O. Ethical problems in conducting experimental medical and biological research on animals. Messenger NAS Ukraine. 2001; 11: 30–33. Available at: https://visnyk-nanu.org.ua/ojs/index.php/v/article/view/4483 (in Ukrainian)
17. Rodríguez PS, Stewart KM, Picknell A, Pemberton L, Tepedino A, Capaldo D, Dennis MM. Pathology of hatchling hawksbill sea turtle (Eretmochelys imbricata) mortalities occurring while under rehabilitative care, 2015–21. Wildlife Diseases. 2023; 59 (1): 109–120. DOI: 10.7589/JWD-D-22-00013.
18. Salyha YT, Snitynskyy VV. The Electron Microscopy of Biological Objects. Lviv, Svit Publ., 1999: 152 p. (in Ukrainian)
19. Schilliger L, Paillusseau C, François C, Bonwitt J. Major emerging fungal diseases of reptiles and amphibians. Pathogens. 2023; 12 (3): 429. DOI: 10.3390/pathogens12030429.
20. Shine R. Reptiles. Curr. Biol. 2013; 23 (6): 227–231. DOI: 10.1016/j.cub.2013.02.024.
21. Skripka MV, Panikar II, Kyrychko BP, Tul OI. The morphological features of the digestive tube in sand lizards, Lacerta agilis (Sauria, Lacertidae). Zoodiversity. 2020; 54 (5): 375–382. DOI: 10.15407/zoo2020.05.375.
22. Uchiyama M, Kikuchi R, Konno N, Wakasugi T, Matsuda K. Localization and regulation of a facilitative urea transporter in the kidney of the red-eared slider turtle (Trachemys scripta elegans). Exp. Biol. 2009; 212 (2): 249–256. DOI: 10.1242/jeb.019703.
23. Wright K. Feeling green: Diagnosing and managing liver disease in reptiles. Proc. Assoc. Reptil. Amphib. Veterinar. Dallas, Texas, USA, 2012: 31–36.