Біологія тварин

Перегляди: 891
Bìol. Tvarin, 2018, volume 20, issue 1, pp. 16–22

ПОРІВНЯННЯ ЯКІСНОГО СКЛАДУ М’ЯЗОВОЇ ТКАНИНИ СТРУМКОВОЇ ФОРЕЛІ, РАЙДУЖНОЇ ФОРЕЛІ ТА АМЕРИКАНСЬКОЇ ПАЛІЇ

Є. O. Барило, Ю. В. Лобойко

Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

Львівський національний університет ветеринарної медицини та біотехнологій імені С. З. Ґжицького,
вул. Пекарська, 50, м. Львів, 79010, Україна

Інтенсифікація і потенціал розвитку сектора аквакультури створили проблеми, що стосуються екологічної чистоти і якості кінцевої рибної продукції. В умовах України надзвичайно мало інформації, яка стосується зокрема об’єктів форелівництва. Тому метою нашої роботи було дослідити і проаналізувати окремі хімічні та біохімічні показники м’язової тканини комерційно прибуткових та цінних аборигенних видів лососевих риб, вирощених в однакових умовах.
Матеріалом для досліджень слугували дволітки (1+) струмкової форелі (Salmo trutta m. fario), райдужної форелі (Oncorhynchus mykiss) та американської палії (Salvelinus fontinalis). Годівля здійснювалася кормами «Aller Aqua». Показники хімічного складу води цього господарства відповідали державному стандарту СОУ 05.01-37-385:006.
За результатами досліджень, вміст вологи у м’язовій тканині струмкової форелі був вищим порівняно з райдужною фореллю та американською палією (гольцем) (P<0,01). У гольця та райдужної форелі значення білка вірогідно вище (P<0,01), ніж у струмкової форелі. Вміст золи в американської палії, струмкової та райдужної форелі становив 1,23 %, 1,16 %, 1,25 % відповідно. Відсоток загальних ліпідів у м’язовій тканині райдужної форелі та американської палії був суттєво вищим порівняно зі струмковою фореллю (P<0,01). Встановлено вищий вміст вільного холестеролу та моно- і диацилгліцеролів у американської палії порівняно зі струмковою і райдужною фореллю (P<0,01).
Результати вказують на те, що досліджені види мають високу харчову цінність. Після аналізу складу м’язової тканини досліджуваних риб встановлено, що американська палія характеризувалася дещо вищими якісними показниками, зокрема такими, як вміст сухої речовини, білок та ліпіди.

Ключові слова: ФОРЕЛЬ, БІЛОК, ЗОЛА, ВОЛОГА, ЗАГАЛЬНІ ЛІПІДИ, КЛАСИ ЛІПІДІВ, SALMO TRUTTA m. FARIO, ONCORHYNHUS MYKIS, SALVELINUS FONTINALIS

  1. Ackman R. G. Seafood lipids. In: Shahidi F., Botta J. R. (Eds.). Seafoods, Chemistry, Processing Technology and Quality. Blackie Academic & Profesional, Glasgow London, 1994, pp. 34–48. https://doi.org/10.1007/978-1-4615-2181-5_4
  2. AOAC (Association of Official Analytical Chemists). Official methods of analysis of the Association of Official Analytical Chemists. 13th ed. Washington, D.C., 1980.
  3. AOAC. Official Methods of Analysis of the Association of Official Analytical Chemists. 16th ed. Arlington, V.A, Author. 1995. https://doi.org/10.3923/jfas.2013.295.298
  4. Barylo Ye. Biochemical and morphometric parameters of pre-larvae of three salmonids species at one-day age. Fisheries science of Ukraine, 2016, 2 (36), pp. 38–47. (in Ukrainian)
  5. Breck J. E. Body composition in fishes: body size matters. Aquaculture, 2014, 433 (20), pp. 40–49. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2014.05.049
  6. Cakmak O., Altuntas A., Ugurcu V., ErdemliH. K., Akyol S. Female Leuciscus lepidus May Be a New Alternative for Fish Oil Supplements. Journal of Chemistry, 2015, 7 p. https://doi.org/10.1155/2015/69630310.1155/2015/696303
  7. Çelikkale M. S., Kurtoğlu İ. Z., Şahin S., Sivri N., Akyol A. Gökkusağı (Oncorhynchus mykiss) ve Kaynak Alabalığı (Salvelinus fontinalis)’nın Et Verim Özellikleri ve Etin Biyokimyasal Bileşiminin Karşılaştırılması. III. Su Ürünleri Sempozyumu, Erzurum, 1998, pp. 41–49. (in Turkish)
  8. Dempson J. B., Schwar C. J., Shears M., Furey G. Comparative proximate body composition of Atlantic salmon with emphasis on parr from fluvial and lacustrine habitats. Journal of Fish Biology, 2004, 64, pp. 1257–1271. https://doi.org/10.1111/j.0022-1112.2004.00389.x
  9. Dumas A., de Lange C. F. M., France J., Bureau D. P. Quantitative description of body composition and rates of nutrient deposition in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 2007, 263, pp. 165–181. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2007.09.026
  10. Ehsania A., Mohammad S. J., Khodayaria M. Differentiation of common marketable-size rainbow trouts (Oncorhynchus mykiss) based on nutritional and dietetic traits: a comparative study. Journal of Applied Animal Research, 2013, 41 (4), pp. 387–391. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2009.06.012
  11. Exler J., Weihrauch J. L. Comprehensive evaluation of fatty acids in foods. VIII. Finfish. Journal of the American Dietetic Association, 1976, 69 (3), pp. 243–248.
  12. Fallah A. A., Saei-Dehkordi S. S., Nematollah A. Comparative assessment of proximate composition, physicochemical parameters, fatty acid profile and mineral content in farmed and wild rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). International Journal of Food Science & Technology, 2011, 46 (4), pp. 767–773. https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.2011.02554.x
  13. Fischer G. J., Held J., Hartleb C., Malison J. Evaluation of brook trout production in a coldwater recycle aquaculture system. Aquacultural engineering, 2009, 41, pp. 109–113. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2009.06.012
  14. Folch J., Lees M., Sloane-Stanley G. H. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues. The Journal of Biological Chemistry, 1957, 226, pp. 497–509.
  15. Haloyan L., Mruk A., Kucheruk A., Terteryan L. Productive characteristics of age-3 brood brown trout (Salmo trutta) reared in the conditions industrial aquaculture. Fisheries science of Ukraine, 2017, 1 (39), pp. 64–72. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2004.07.001
  16. Huss H. H. Quality and quality changes in fresh fish, FAO Fisheries Technical Paper no. 348, Rome, Italy, 1995.
  17. Jabeen F., Chaudhry A. S. Nutritional composition of seven commercially important freshwater fish species and the use of cluster analysis as a tool for their classification. The Journal of Animal & Plant Sciences, 2016, 26 (1), pp. 282–290.
  18. Jan U., Shah M., Manzoor T., Ganie S. A. Variations of Protein Content in the Muscle of Fish Schizothorax niger. American-Eurasian Journal of Scientific Research, 2012, 7 (1), pp. 01–04. https://doi.org/10.5829/idosi.aejsr.2012.7.1.64126
  19. Karabulut H. A., Balta F., Yandi İ., Serezli R. The Efects of Diferent Levels of Ascorbic Acid on Growth Performance and Meat Composition of Brook Trout (Salvelinus fontinalis). Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 2011, 17 (2), pp. 303–308. https://doi.org/10.9775/kvfd.2010.3538
  20. Kaya Y., Erdem M. E. Seasonal comparison of wild and farmed brown trout (Salmo trutta forma fario L., 1758): crude lipid, gonadosomatic index and fatty acids. International Journal of Food Sciences and Nutrition, 2009, 60 (5), pp. 413–423. https://doi.org/10.1080/09637480701777886
  21. Kaya Y., Erdem M. E., Turan H. Monthly Differentiation in Meat Yield, Chemical and Amino Acid Composition of Wild and Cultured Brown Trout (Salmo Trutta Forma Fario Linneaus, 1758). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 2014, 14, pp. 479–486. https://doi.org/10.4194/1303-2712-v14_2_19
  22. Keriko J., Chege M., Magu C. W., Mwachiro M. M., Murigi E. C., Githua A. N. Kareru P. G. Fish lipid contents and classes of selected fish species found in Lake Naivasha (Kenya) and the fish feeding habits of the lake’s inhabitants. African journal of pharmacy and pharmacology, 2010, 4 (10), pp. 745–753.
  23. King M., Boyd L., Sheldon B. Antioxidant Properties of Individual Phospholipids in a Salmon Oil Model System. Journal of the American Oil Chemists Society, 1992, 69 (6), pp. 545–551. https://doi.org/10.1007/BF02636106
  24. Lochmann S. E., Maillet G. L., Frank K. T., Taggart C. T. Lipid class composition as a measure of nutritional condition in individual larval Atlantic cod (Gadus morhua). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 1995, 52, pp. 1294–1306. https://doi.org/10.1139/f95-126
  25. Lowry O. H., Roserrough N. J., Farr A. L., Randall R. J. Protein measurement with the folin phenol reagent. Journal of Biology and Chemistry, 1951, 193, pp. 265–275.
  26. Moriya H., Hosokawa M., Miyashita K. Combination effect of herring roe lipids and proteins on plasma lipids and abdominal fat weight of mouse. Journal of Food Science, 2007, 72 (5), pp. 231–234. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2004.07.001
  27. Mruk A., Terteryan L., Khandozhivska A., Terteryan L. Monitoring of brown trout growth in industrial conditions of the fish farm “Ishkhan”. Fisheries science of Ukraine, 2013, pp. 31–37. (in Ukrainian)
  28. Okumus I., Bascinar N. A comparative study on water column and bottom feeding habit of tank reared brook trout. Turkish Journal of Marine Sciences, 2002, 8 (1), pp. 17–26.
  29. Oluwaniyi O.O., Dosumu O.O. Preliminary studies on the effect of processing methods on the quality of three commonly consumed marine fishes in Nigeria. Biochemistry, 2009, 21 (1), pp. 1–7.
  30. Puwastien P., Judprasong K., Kettwan E., Vasanachitt K., Nakngamanong Y. Bhattacharjee L. Proximate Composition of Raw and Cooked Thai Freshwater and Marine Fish. Journal of Food Composition and Analysis, 1999, 12 (1), pp. 9–16. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2004.07.001
  31. Rasmussen R. S., Ostenfeld T. H. Effect of growth rate on quality traits and feed utilisation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and brook trout (Salvelinus fontinalis). Aquaculture, 2000, 184 (3), pp. 327–337. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2004.07.001
  32. Rasoarahona J. R. E., Barnathan G., Bianchini J. P., Gaydou E. M. Influence of season on the lipid content and fatty acid profiles of three tilapia species (Oreochromis nilolicus, O. macrochir and Tilapia rendalli) from Madagascar. Food Chemistry, 2005, 91 (4), pp. 683–694. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2004.07.001
  33. Ringø E., Vennø A. T., Cato B. I. Effects of starvation on the lipid composition in muscle tissue and liver of hatchery-reared Arctic charr, Salvelinus alpinus (L), from Lake Takvatn. Fiskeridirektoratets Skrifter. Serie Ernæring, 1990, 3, pp. 13–20.
  34. Shamsudin S., Salimon J. Physicochemical characteristics of aji-aji fish (Seriola nigrofasciata) lipids. The Malaysian Journal of Analytical Sciences, 2006, 10 (1), pp. 55–58.
  35. Shi P. S, Wang Q., Zhu Y. T., Gu Q. H., Xiong B. X. Comparative study on muscle nutritional composition of juvenile bighead carp (Aristichthys nobilis) and paddlefish (Polyodon spathula) fed live feed. Turkish Journal of Zoology, 2013, 37 (3), pp. 321–328.
  36. Shirai N., Suzuki H., Tokairin S., Ehara H., Wada S. Dietary and seasonal effects on the dorsal meat lipid composition of Japanese (Silurus asotus) and Thai catfish (Clarias macrocephalus and hybrid Clarias macrocephalus and Clarias galipinus). Comparative Biochemistry and Physiology. Part A, Molecular & Integrative Physiology, 2002, 132 (3), pp. 609–619. https://doi.org/10.1016/S1095-6433(02)00081-8
  37. Souza M. L. R., Macedo-Viegas E. M., Zua­non J. A. S., Carvalho M. R. B., Goes E. S. R. Processing yield and chemical composition of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) with regard to body weight. Acta Scientiarum. Animal Sciences, 2015, 37 (2), pp. 103–108. https://doi.org/10.4025/actascianimsci.v37i2.24165
  38. Stancheva M., Dobreva D., Merdzhanova A., Galunska B. Vitamin content and fatty acids composition of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Plodiv. University, Paisii Hilendarski, Bulgaria Scientific Papers, 2010, 37 (5), pp. 117–123.
  39. Tidballb M. M., Exlerc J., Somanchic M., Williamsc J., Krafta C., Curtisa P., Tidballa, K. G. Addressing information gaps in wild-caught foods in the US: Brook trout nutritional analysis for inclusion into the USDA national nutrient database for standard reference. Journal of Food Composition and Analysis, 2017, 60, pp. 57–63. https://doi.org/10.1016/j.jfca.2017.03.004
  40. Tocher D. R. Metabolism and functions of lipids and fatty acids in teleost fish. Reviews in Fisheries Science, 2003, 11 (2), pp. 107–184. https://doi.org/10.1080/713610925
  41. Weinstein M. P., Litvin S. Y., Guida V. A. Stable Isotope and Biochemical Composition of White Perch in a Phragmites Dominated Salt Marsh and Adjacent Waters. Wetlands, 2010, 30 (6), 1181–1191. https://doi.org/10.1007/s13157-010-0102-2
  42. Yeşilayer N., Genç N. Comparison of proximate and fatty acid compositions of wild brown trout and farmed rainbow trout. South African Journal of Animal Science, 2013, 43 (1), pp. 89–97. https://doi.org/10.4314/sajas.v43i1.11

скачати повний текст статті в форматі PDF

РЕКОМЕНДАЦІЇ ДЛЯ АВТОРІВ
ПУБЛІКАЦІЙНА ЕТИКА
ПРОЦЕС РЕЦЕНЗУВАННЯ
ПОЛІТИКА ЩОДО ПЛАГІАТУ
ПОЛІТИКА ВІДКРИТОГО ДОСТУПУ
КОНФІДЕЦІЙНІСТЬ
АВТОРСЬКІ ПРАВА ТА ЛІЦЕНЗУВАННЯ
АРХІВ

ICLOGO

DOAJ logo colour

gslogo

cr

cabi

nbuv

ouci0

WorldCat Logo

oa

Search