Завантажити повний текст статті у форматі PDF

Дія L-глутамінової кислоти на зміни біохімічних показників щурів, інтоксикованих тетрахлорметаном

Н. О. Салига

Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

Інститут біології тварин НААН,
вул. В. Стуса, 38, м. Львів, 79034, Україна

Наведено результати досліджень впливу введенння L-глутамінової кислоти (L-Glu) на динаміку окремих біохімічних показників організму щурів за їх інтоксикації тетрахлорметаном (CCl₄). У тканинах і крові щурів досліджували зміни активностей аланін- та аспартатамінотрансфераз (АлАТ, АсАТ). У крові дослідних тварин також визначали концентрації креатиніну, триацилгліцеролу та холестеролу. Внутрішньоочеревинне введення щурам дослідних груп CCl₄ призвело до змін у крові тварин досліджуваних показників — підвищення активностей амінотрансфераз, триацилгліцеролу та холестеролу. Водночас спостерігали зниження активностей АлАТ у тканинах міокарда та селезінки інтоксикованих тварин, АсАТ — у їхньому мозку, встановлено підвищення активності АлАТ у тканинах легень та підвищення активності АсАТ у тканинах селезінки. У свою чергу, за додаткового введення L-Glu тваринам, інтоксикованим тетрахлорметаном, спостерігали пом’якшення або відсутність змін більшості досліджуваних показників, а саме у крові активність АсАТ коливалася у межах контрольних значень, а концентрації триацилгліцеролу та холестеролу L-Glu не змінювались порівняно з контролем. Також за дії досліджуваної амінокислоти не було виявлено змін в активностях АлАТ у тканинах легень та АсАТ у тканинах селезінки. Отримані результати вказують на корегуючий вплив L-Glu на фізіолого-біохімічні параметри організму щурів за їх інтоксикації тетрахлорметаном.

Ключові слова: L-глутамінова кислота, щурі, кров, CCl₄, АлАТ, АсАТ

1. Albarracin SL, Baldeon ME, Sangronis E, Petruschina AC, Reyes FGR. L-glutamate: a key amino acid for senory and metabolic functions. Latinoam. Nutr. 2016; 66 (2): 101–112. PMID: 29737666.
2. Al-Rasheed NM, Al-Rasheed NM, Faddah LM, Mohamed AM, Mohammad RA, Al-Amin M. Potential impact of silymarin in combination with chlorogenic acid and/or melatonin in combating cardiomyopathy induced by carbon tetrachloride. Saudi J. Biol. 2014; 21 (3): 265–274. DOI: 10.1016/j.sjbs.2013.09.006.
3. Boll M, Weber LW, Becker E, Stampfl A Mechanism of carbon tetrachloride-induced hepatotoxicity. Hepatocellular damage by reactive carbon tetrachloride metabolites. Z. Naturforsch. 2001; 56 (7–8): 649–659. DOI: 10.1515/znc-2001-7-826.
4. Cynober L. Metabolism of dietary glutamate in adults. Nutr. Metab. 2018; 73 (5): 5–14. DOI: 10.1159/000494776.
5. Deniz GY, Laloglu E, Koc K, Geyikoglu F. Hepatoprotective potential of Ferula communis extract for carbon tetrachloride induced hepatotoxicity and oxidative damage in rats. Biotech Histochem. 2019; 94 (5): 334–340. DOI: 10.1080/10520295.2019.1566831.
6. Dutta S, Chakraborty AK, Dey P, Kar P, Guha P, Sen S, Kumar A, Sen A, Chaudhuri TK. Amelioration of CCl₄ induced liver injury in swiss albino mice by antioxidant rich leaf extract of Croton bonplandianus PLoS One. 2018; 3 (4): e0196411. DOI: 10.1371/journal.pone.0196411.
7. Ernst L, Zieglowski L, Schulz M, Moss M, Meyer M, Weiskirchen R, Palme R, Hamann M, Talbot SR, Tolba RH. Severity assessment in mice subjected to carbon tetrachloride. Rep. 2020; 10: 15790. DOI: 10.1038/s41598-020-72801-1.
8. Hamed H, Gargouri M, Bellassoued K, Ghannoudi Z, Elfeki A, Gargouri A. Cardiopreventive effects of camel milk against carbon tetrachloride induced oxidative stress, biochemical and histological alterations in mice. Physiol. Biochem. 2018; 124 (3): 253–260. DOI: 10.1080/13813455.2017.1395889.
9. Hou Y, Wu G. L-glutamate nutrition and metabolism in swine. Amino Acids. 2018; 50: 1497–1510. DOI: 10.1007/s00726-018-2634-3.
10. Li R, Zhang P, Li C, Yang W, Yin Y, Tao K. Tert-butylhydroquinone mitigates carbon tetrachloride induced hepatic injury in mice. J. Med. Sci. 2020; 17 (14): 2095–2103. DOI: 10.7150/ijms.45842.
11. Magi S, Piccirillo S, Amoroso S. The dual face of glutamate: from a neurotoxin to a potential survival factor — metabolic implications in health and disease. Mol. Life Sci. 2019; 76: 1473–1488. DOI: 10.1007/s00018-018-3002-x.
12. McGill MR, Jaeschke Animal models of drug-induced liver injury. Biochim. Biophys. Acta Mol. Basis Dis. 2019; 1865 (5): 1031–1039. DOI: 10.1016/j.bbadis.2018.08.037.
13. Nevzorova YA, Boyer-Diaz Z, Cubero FJ, Gracia-Sancho J. Animal models for liver disease — A practical approach for translational research. Hepatol. 2020; 73 (2): 423–440. DOI: 10.1016/j.jhep.2020.04.011.
14. Ono R, Yoshioka Y, Furukawa Y, Naruse M, Kuwagata M, Ochiya T, Kitajima S, Hirabayashi Y. Novel hepatotoxicity biomarkers of extracellular vesicle (EV)-associated miRNAs induced by CCl₄. Rep. 2020; 7: 685–692. DOI: 10.1016/j.toxrep.2020.05.002.
15. Pergel A, Tümkaya L, Çolakoğlu MK, Demiral G, Kalcan S, Özdemir A, Mercantepe T, YilmazA. Effects of infliximab against carbon tetrachloride-induced intestinal injury via lipid peroxidation and apoptosis. Exp. Toxicol. 2019; 38 (11): 1275–1282. DOI: 10.1177/0960327119867758.
16. Salyha N. Effects of L-glutamic acid and pyridoxine on glutathione depletion and lipid peroxidation generated by epinephrine-induced stress in rats. Biochem. J. 2018; 90 (4): 102–110. DOI: 10.15407/ubj90.04.102.
17. Salyha NO. Effect of glutamic acid and cysteine on oxidative stress markers in rats. Biochem. J. 2020; 92 (6): 165–172. DOI: 10.15407/ubj92.06.165.
18. Scholten D, Trebicka J, Liedtke C, Weiskirchen R. The carbon tetrachloride model in mice. Anim. 2015; 49 (1): 4–11. DOI: 10.1177/0023677215571192.
19. Tabassum S, Ahmad S, Madiha S, Shahzad S, Batool Z, Sadir S, Haider S. Free L‑glutamate‑induced modulation in oxidative and neurochemical profle contributes to enhancement in locomotor and memory performance in male rats. Rep. 2020; 10: 11206. DOI: 10.1038/s41598-020-68041-y.
20. Tomé D. The roles of dietary glutamate in the intestine. Nutr. Metab. 2018; 73 (5): 15–20. DOI: 10.1159/000494777.
21. Ustuner D, Colak E, Dincer M, Tekin N, Burukoglu Donmez D, Akyuz F, Colak E, Kolaç U, Entok E, Ustuner MC. Posttreatment effects of Olea europaea leaf extract on carbon tetrachloride-induced liver injury and oxidative stress in rats. J. Med. Food. 2018; 21 (9). DOI: 10.1089/jmf.2017.0143.
22. Li X, Liu X, Zhang Y, Cheng C, Fan J, Zhou J, Garstka MA, Li Z. Hepatoprotective effect of apolipoprotein A4 against carbon tetrachloride induced acute liver injury through mediating hepatic antioxidant and inflammation response in mice. Biophys. Res. Commun. 2021; 534: 659–665. DOI: 10.1016/j.bbrc.2020.11.024.
23. Xue H, Field CJ. New role of glutamate as an immunoregulator via glutamate receptors and transporters. Front Biosci. 2011; 3 (3): 1007–1020. DOI: 10.2741/205.