Завантажити повний текст статті у форматі PDF

Прогрес у дослідженні маститу молочних корів

Пінг Сюй

Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

Факультет ветеринарної медицини, Сумський національний аграрний університет,
вул. Герасима Кондратьєва, 160, м. Суми, 40021, Україна

Мастит — це запальне захворювання молочної залози, яке призводить до значних економічних збитків і спричиняє проблеми життєздатності тварин. Розвиток і регресія молочних залоз безпосередньо пов’язані з лактацією корів. Багато різних мікробних та екологічних чинників можуть провокувати мастит. Escherichia coli і Staphylococcus aureus були основною причиною маститу. Лікування клінічного та субклінічного маститу переважно зосереджене на застосуванні антибіотиків. Хоча на сьогодні досягнуто певного прогресу в клінічній діагностиці маститів, лікування антибіотиками, патогенетичний контроль та молекулярний механізм патогенності маститів молочних корів все ще недостатньо вивчені. Отже, важливо зрозуміти механізми контролю імунної відповіді на молекулярному рівні. Некодуючі РНК відіграють важливу роль у різних біологічних процесах, зокрема проліферації клітин, диференціюванні та апоптозу. Однак їхні функції та профілі у молочних корів значною мірою невідомі. Тут представлено огляд прогресу досліджень патогенезу, заходів профілактики та імунного механізму маститу молочних корів.

Ключові слова: молочна корова, мастит, етіологія, імунний механізм, статус дослідження

1. Bradley A. Bovine mastitis: an evolving disease. J. 2002; 164 (2): 116–128. DOI: 10.1053/tvjl.2002.0724.
2. Burvenich C, Van Merris V, Mehrzad J, Diez-Fraile A, Duchateau L. Severity of coli mastitis is mainly determined by cow factors. Vet. Res. 2003; 34 (5): 521–564. DOI: 10.1051/vetres:2003023.
3. Elling R, Chan J, Fitzgerald KA. Emerging role of long noncoding RNAs as regulators of innate immune cell development and inflammatory gene expression. J. Immunol. 2016; 46 (3): 504–512. DOI: 10.1002/eji.201444558.
4. Ganda EK, Gaeta N, Sipka A, Pomeroy B, Oikonomou G, Schukken YH, Bicalho RC. Normal milk microbiome is reestablished following experimental infection with Escherichia coli independent of intramammary antibiotic treatment with a third-generation cephalosporin in bovines. Microbiome. 2017; 5 (1): 74. DOI: 10.1186/s40168-017-0291-5.
5. He G, Ma M, Yang W, Wang H, Zhang Y, Gao MQ. SDF-1 in mammary fibroblasts of bovine with mastitis induces EMT and inflammatory response of epithelial cells. J. Biol. Sci. 2017; 13 (5): 604–614. DOI: 10.7150/ijbs.19591.
6. Hogeveen H, Huijps K, Lam TJGM. Economic aspects of mastitis: new developments. New Zeal. Vet. J. 2011; 59 (1): 16–23. DOI: 10.1080/00480169.2011.547165.
7. Jin W, Ibeagha-Awemu EM, Liang G, Beaudoin F, Zhao X, Guan LL. Transcriptome microRNA profiling of bovine mammary epithelial cells challenged with Escherichia coli or Staphylococcus aureus bacteria reveals pathogen directed microRNA expression profiles. BMC Genom. 2014; 15 (1): 181. DOI: 10.1186/1471-2164-15-181.
8. Lawless N, Foroushani ABK, McCabe MS, O’Farrelly C, Lynn DJ. Next generation sequencing reveals the expression of a unique miRNA profile in response to a gram-positive bacterial infection. Plos One. 2013; 8 (3): e57543. DOI: 10.1371/journal.pone.0057543.
9. Seegers H, Fourichon C, Beaudeau F. Production effects related to mastitis and mastitis economics in dairy cattle herds. Res. 2003; 34 (5): 475–491. DOI: 10.1051/vetres:2003027.
10. Wang H. Identification and functional verification of lncRNA related to mastitis in dairy cows. Northwest Agriculture and Forestry Technology University. 2018. (in Chinese)
11. Wang X, Xiu L, Hu Q, Cui X, Liu B, Tao L, Wang T, Wu J, Chen Y, Chen Y. Deep sequencing-based transcriptional analysis of bovine mammary epithelial cells gene expression in response to in vitro infection with Staphylococcus aureus Plos One. 2013; 8 (12): e82117. DOI: 10.1371/journal.pone.0082117.
12. Wei T, Yang M, Tang Q, Zhong R. Research progress of long-chain non-coding RNA in immune inflammatory response. Med. 2015; 30 (10): 1044–1047. DOI: 10.3969/j.issn.1673-8640.2015.10.019. (in Chinese)
13. Wellnitz O, Bruckmaier RM. The innate immune response of the bovine mammary gland to bacterial infection. J. 2012; 192 (2):148–152. DOI: 10.1016/j.tvjl.2011.09.013.
14. Whelehan CJ, Meade KG, Eckersall PD, Young FJ, O’Farrelly C. Experimental Staphylococcus aureus infection of the mammary gland induces region-specific changes in innate immune gene expression. Immunol. Immunopathol. 2011; 140 (3–4): 181–189. DOI: 10.1016/j.vetimm.2010.11.013.
15. Yang Y, Zhang Y, Zhou L, Cheng G, Tao J, Zhao X. Comparative proteomics study of breast membrane proteins in dairy cow mastitis. National Agricultural Sciences, 2010; 43 (18): 3862–3868.
16. Yu X, Feng B, He P, Shan L. From chaos to harmony: responses and signaling upon microbial pattern recognition. Annual Rev. Phytopathol. 2017; 55: 109–137. DOI: 10.1146/annurev-phyto-080516-035649.
17. Zhang W, Li X, Xu T, Ma M, Zhang Y, Gao MQ. Inflammatory responses of stromal fibroblasts to inflammatory epithelial cells are involved in the pathogenesis of bovine mastitis. Cell Res. 2016; 349 (1): 45–52. DOI: 10.1016/j.yexcr.2016.09.016.
18. Zhang WY, Wang H, Qi S, Wang X, Li X, Zhou K, Zhang Y, Gao MQ. CYP1A1 relieves lipopolysaccharide-induced inflammatory responses in bovine mammary epithelial cells. Mediators Inflamm. 2018; 5: 4093285. DOI: 10.1155/2018/4093285.