Біологія тварин

Діагностичне значення інтегральних імуногематологічних індексів як маркерів хронічного стресу у курей

Ю. В. Осадча

Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

Національний університет біоресурсів і природокористування України,
вул. Героїв Оборони, 15, м. Київ, 03041, Україна

Вивчення стресів в умовах промислових технологій утримання курей та визначення ступеня впливу технологічних стресорів на їхній фізіологічний стан є необхідною вимогою у розробленні нових методів профілактики стресів через вибір оптимальних способів утримання птиці. Мета досліджень полягала у визначенні інформативності інтегральних імуногематологічних індексів для діагностики стрес-індукованих порушень в організмі курей за впливу технологічного стресору різної інтенсивності. Хронічний технологічний стрес був змодельований довготривалим утриманням курей за підвищеної щільності посадки. Інтенсивність дії стресора визначали за мірою підвищення щільності утримання курей. Інтегральні імуногематологічні індекси розраховували на основі розширеного загального аналізу крові. В організмі курей, які внаслідок тривалого утримання за підвищеної щільності перебували у стані хронічного стресу, виявлено високий рівень ендогенної інтоксикації і порушення імунологічної реактивності, на що вказує підвищення індексу зсуву лейкоцитів та індексу імунореактивності, а також індексів співвідношення: лейкоцитів і ШОЕ; гетерофілів і лімфоцитів; лімфоцитів і моноцитів; гетерофілів і моноцитів. За хронічного стресу у курей спостерігали активацію клітинної ланки системи імунітету, активну адаптивну реакцію білої крові, а також переважання реакцій уповільненого типу над гіперчутливістю негайного типу, на що вказують зниження лімфоцитарно-гранулоцитарного, загального, лімфоцитарного індексів та індексу співвідношення лімфоцитів і еозинофілів. Доведено, що інтегральні імуногематологічні індекси є перспективними маркерами для діагностики хронічного стресу у курей.

Ключові слова: імуногематологічні індекси, кури, стрес, імунологічна реактивність, ендогенна інтоксикація

1. Belyaeva EY, Buslovskaya LK. Adaptive reactions and biochemical parameters of the blood of chickens under different light conditions. Sci. Bull. Belgorod State Univer., Ser. Nat. Sci. 2012; 21 (140), 21/1: 143–148. Available at: http://dspace.bsu.edu.ru/handle/123456789/18540 (in Russian)
2. Bondarchuk IV, Sydorchuk LP, Sydorchuk IY. Adaptation stress level and cell reactivity in arterial hypertensive patients with coronary heart disease. Bukovynian Med. Bull. 2016; 20 (2/78): 16–19. DOI: 10.24061/2413-0737.XX.2.78.2016.62. (in Ukrainian)
3. Dawkins MS. Behavior as a tool in the assessment of animal welfare. Zool. 2003; 106 (4): 383–387. DOI: 10.1078/0944-2006-00122.
4. Derkho MA, Samoilova ES. Integral indices of intoxication as a criterion for assessing the level of endogenous intoxication in babesiosis. Sci. Notes KSAVM N. E. Bauman. 2011; 207: 170–177. (in Russian)
5. Djuriak VS. Cellular reactivity and stress level adaptivity of patients with community acquired pneumonia. Clin. Exp. Pathol. 2015; 14 (4): 32–35. DOI: 10.24061/1727-4338.XIV.4.54.2015.8. (in Ukrainian)
6. Fisinin VI, Papazyan T, Suray P. Innovative methods of dealing with stress in poultry. Poultry Prod. 2009; 8: 10–14. (in Russian)
7. Flügge G. Effects of cortisol on brain alpha2-adrenoceptors: potential role in stress. Neurosci. Biobehav. Rev. 1999; 23 (7): 949–956. DOI: 10.1016/S0149-7634(99)00028-7.
8. Gao SQ, Huang LD, Dai RJ, Chen DD, Hu WJ, Shan YF. Neutrophil-lymphocyte ratio: a controversial marker in predicting Crohn’s disease severity. Int. J. Clin. Exp. Pathol. 2015; 8 (11): 14779–14785. PMID: 26823804.
9. Heidt T, Sager HB, Courties G, Dutta P, Iwamoto Y, Zaltsman A, von Zur Muhlen C, Bode C, Fricchione GL, Denninger J, Lin CP, Vinegoni C, Libby P, Swirski FK, Weissleder R, Nahrendorf M. Chronic variable stress activates hematopoietic stem cells. Nat. Med. 2014; 20 (7): 754–758. DOI: 10.1038/nm.3589.
10. Kavtarashvili AS, Kolokolnikova TN. Physiology and productivity of poultry under stress (review). Agricul. Biol. 2010; 4: 25–37. Available at: http://www.agrobiology.ru/4-2010kavtarashvili.html (in Russian)
11. Khabirov TS. The level of the reactive response of neutrophils as an indicator of the severity of endogenous intoxication in abdominal sepsis. Proc. IX SFULT Congress, Luhansk. 2002: 223. (in Russian)
12. Kholodkovskaya VD, Barabanov AL. Using integral hematological indices to assess severity of endogenous toxicosis in chronic dermatoses. Internat. Sci. Pract. Conf. “World Sci.”. 2015; 3 (2): 69–72.
13. Letkin AI. Leukocytal indexes of laying hen blood in nonspecific stress syndrome. Bull. Altai State Agr. Univer. 2020; 2 (184): 102–108. Available at: http://www.asau.ru/vestnik/2020/2/102-108.pdf (in Russian)
14. Lewandowski RA. Cellular and immunological reactivity of the organism in patients after resection of the upper and lower jaws for the removal of malignant tumors. Clinical and experimental pathology. 2014; 12 (2): 83–87. (in Ukrainian)
15. Marino L. Thinking chickens: a review of cognition, emotion, and behavior in the domestic chicken. Anim. Cognition. 2017; 20: 127–147. DOI: 10.1007/s10071-016-1064-4.
16. Matolic UD. Diagnostic value of hematological indices in phlegmons of the maxillofacial area and neck. Sci. Bull. Uzhhorod Univer. Med. Ser. 2016; 1 (53): 108–110. (in Ukrainian)
17. Maxwell MH, Hocking PM, Robertson GW. Differential leucocyte responses to various degrees of food restriction in broilers, turkeys and ducks. Brit. Poult. Sci. 1992; 33 (1): 177–187. DOI: 10.1080/00071669208417455.
18. Miftakhutdinov AV. Experimental approaches to stress diagnostics in poultry (review). Agricult. Biol. 2014; 2: 20–30. DOI: 10.15389/agrobiology.2014.2.20eng. (in Russian)
19. Mustafina ZG, Kramarenko YS, Kobtseva VY. Integral hematological parameters in the assessment of the body’s immunological reactivity in patients with ophthalmopathology. Clin. Lab. Diagnost. 1999; 5: 47–48. (in Russian)
20. Nikiforov A. Neurology: a complete explanatory dictionary. Moscow, Eksmo. 2010; 464. (in Russian)
21. Nwaigwe CU, Ihedioha JI, Shoyinka SV, Nwaigwe CO. Evaluation of the hematological and clinical biochemical markers of stress in broiler chickens. Vet. World. 2020; 13 (10): 2294–2300. DOI: 10.14202/vetworld.2020.2294-2300.
22. Ostrovska LY, Moshel TM, Ivanytskiy IO. Analysis of haemograms in patients with inflammatory and inflammatory-dystrophic changes of periodontal tissue. Bull. Probl. Biol. Med. 2016; 1 (126): 360–363. Available at: https://vpbm.com.ua/ua/vpbm-2016-01-1/7565 (in Ukrainian)
23. Ostrovsky VK. On the indicators of the norm of the leukocyte index of intoxication. Clin. Lab. Diagnost. 2003; 1: 45–46. (in Russian)
24. Sierzega M, Lenart M, Rutkowska M, Surman M, Mytar B, Matyja A, Siedlar M, Kulig J. Preoperative neutrophil-lymphocyte and lymphocyte-monocyte ratios reflect immune cell population rearrangement in resectable pancreatic cancer. Ann. Surg. Oncol. 2017; 24 (3): 808–815. DOI: 10.1245/s10434-016-5634-0.
25. Sipliviy VA, Kohn EV, Evtushenko DV. Application of the leukocyte indices for prognostication of peritonitis outcome. Clin. Surg. 2009; 9: 21–26. (in Russian)
26. Tkachenko EA, Derkho MA. Leukocyte indices in experimental cadmium intoxication in mice. Proc. Orenburg State Agr. Univer. 2014; 3: 81–83. (in Russian)
27. Radzykhovskii ML, Goralskii LP, Borissevich BV, Dyshkant OV. Integral indexes of intoxication in caninae coronaviridae enteritis. Sci. Bull. Vet. Med. 2018; 2: 13–19. DOI: 10.33245/2310-4902-2018-144-2-13-19. (in Ukrainian)
28. Raznatovskaya EN. Integral indices of endogenous intoxication in patients with chemoresistant pulmonary tuberculosis. Curr. Iss. Pharm. Med. Sci. Pract. 2012; 2 (9): 119–120. (in Russian)
29. Rekalova OM, Panasyukova OR, Koval NG. The use of leukocyte indices in immunological evaluation of inflammatory activity in patients with chronic obstructive pulmonary disease. Asthma Allergy. 2017; 1: 27–33. Available at: http://www.ifp.kiev.ua/doc/journals/aa/17/pdf17-1/27.pdf (in Ukrainian)
30. Rushen J. Problems associated with the interpretation of physiological data in the assessment of animal welfare. Appl. Anim. Behaviour Sci. 1991; 28 (4): 381–386. DOI: 10.1016/0168-1591(91)90170-3.
31. Scanes CG. Biology of stress in poultry with emphasis on glucocorticoids and the heterophil to lymphocyte ratio. Poult. Sci. 2016; 95 (9): 2208–2215. DOI: 10.3382/ps/pew137.
32. Shabalov NP, Ivanov DO, Shabalova NN. Heterogeneity of the systemic inflammatory response in neonatal. Med. Acad. J. 2001; 1 (3): 81–90. (in Russian)
33. Stanishevskaya OI, Fedorova ES. Comparative evaluation of the peculiarities of stress reactivity of the Russian white breed chicken with sw+ mutation and amrox in hypothermia conditions during embryonal and early postnatal periods of ontogenesis. Agricult. Biol. 2019; 54 (6): 1135–1143. DOI: 10.15389/agrobiology.2019.6.1135rus. (in Russian)
34. Surai P, Fisinin VI. The modern anti-stress technologies in poultry: from antioxidants to vitagenes. Agricult. Biol. 2012; 4: 3–13. DOI: 10.15389/agrobiology.2012.4.3eng.
35. Weimer SL, Wideman RF, Scanes CG, Mauromoustakos A, Christensen KD, Vizzier-Thaxton Y. An evaluation of methods for measuring stress in broiler chickens. Poult. Sci. 2018; 97 (10): 3381–3389. DOI: 10.3382/ps/pey204.
36. Yabluchanskiy NI, Pilipenko VA, Kondratenko PH. Leukocyte shift index as a marker of the body’s reactivity in acute inflammation. Lab. Work. 1983; 1: 60–61. (in Russian)
37. Zamaziy AA. Hemocytopoiesis of functionally active newborn calves and calves in the state of hypoxia. Theor. Appl. Vet. Med. 2018; 6 (3): 44‒49. DOI: 10.32819/2018.63009.
38. Zubchenko SO, Akimova VM, Lapovetz LE. Detection donozological violations under change of integral hematological indices in patients with chronic Epstein-Barr virus infection in latent phase. Bull. Probl. Biol. Med. 2014; 4 (1/113): 125–128. Available at: https://vpbm.com.ua/ua/vpbm-2014-04-1/7214 (in Ukrainian)