Завантажити повний текст у PDF
Bìol. Tvarin. 2023; 25 (3): 13–18.
https://doi.org/10.15407/animbiol25.03.013
Received 03.06.2023 ▪ Revision 13.07.2023 ▪ Accepted 22.09.2023 ▪ Published online 02.10.2023
Роль олійних розчинів тіосульфонатів у модуляції антиоксидантних показників у нирках щурів
Н. М. Любас, І. Я. Олійник
Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її., Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.
Інститут біології тварин НААН, вул. В. Стуса, 38, м. Львів, 79034, Україна
Досліджували вплив естерів тіосульфонатів, зокрема S-етил-4-амінобензентіосульфонату (ЕТС), S-аліл-4-амінобензентіосульфонату (АТС) та S-аліл-4-ацетил-амінобензентіосульфонату (ААТС), у дозі 50 мг/кг маси тіла на систему антиоксидантного захисту в нирках щурів. Нирки є важливим органом у підтримці метаболічного гомеостазу і постійно зазнають впливу активних форм кисню (АФК) та оксидативного стресу. Ефективність системи антиоксидантного захисту оцінювали вимірюванням маркерів оксидативного стресу, зокрема показників пероксидного окиснення ліпідів (ПОЛ) та активності ключових ензимів антиоксидантної системи — таких, як каталаза (КАТ), супероксиддисмутаза (СОД), глутатіонпероксидаза (ГП), глутатіонредуктаза (ГР), та рівень відновленого глутатіону (ВГ). Дисфункцію системи антиоксидантного захисту спостерігали в нирках тварин, які споживали з кормом олію, про що свідчать показники підвищеного вмісту гідропероксидів ліпідів, зниження активності СОД і каталази, ензимів глутатіонової ланки та знижений вміст відновленого глутатіону. Споживання тіосульфонатів, особливо ЕТС та ААТС, сприяло стабілізації системи антиоксидантного захисту. Позитивний антиоксидантний ефект тіосульфонатів можна частково пояснити їхньою здатністю запобігати утворенню вільних радикалів, перехоплювати і нейтралізувати активні форми оксигену та інші шкідливі речовини, здатні пошкоджувати клітини організму.
Ключові слова: S-етил-4-амінобензентіосульфонат, S-аліл-4-амінобензентіосульфонат, S-аліл-4-ацетиламіно-бензентіосульфонат, нирки, антиоксидантна система
- Amaral EP, Foreman TW, Namasivayam S, Hilligan KL, Kauffman KD, Bomfim CCB, Costa DL, Barreto-Duarte B, Gurgel-Rocha C, Santana MF, Cordeiro-Santos M, Du Bruyn E, Riou C, Aberman K, Wilkinson RJ, Barber DL, Mayer-Barber KD, Andrade BB, Sher A. GPX4 regulates cellular necrosis and host resistance in Mycobacterium tuberculosis infection. Exp. Med. 2022; 219 (11): e20220504. DOI: 10.1084/jem.20220504.
- Ayepola OR, Cerf ME, Brooks NL, Oguntibeju OO. Kolaviron, a biflavonoid complex of Garcinia kola seeds modulates apoptosis by suppressing oxidative stress and inflammation in diabetes-induced nephrotoxic rats. Phytomedicine. 2014; 21 (14): 1785–1793. DOI: 10.1016/j.phymed.2014.09.006.
- Bijarnia RK, Bachtler M, Chandak PG, van Goor H, Pasch A. Sodium thiosulfate ameliorates oxidative stress and preserves renal function in hyperoxaluric rats. PloS One. 2015; 10 (4): e0124881. DOI: 10.1371/journal.pone.0124881.
- Brittebo EB, Eriksson C, Brandt I. Effects of glutathione-modulating agents on the covalent binding and toxicity of dichlobenil in the mouse olfactory mucosa. Appl. Pharmacol. 1992; 114 (1): 31–40. DOI: 10.1016/0041-008X(92)90093-8.
- Cui X, Yu X, Wu X, Huang L, Tian Y, Huang X, Zhang Z, Cheng Z, Guo Q, Zhang Y, Cai Y, Zhan Q. Acute kidney injury in patients with the coronavirus disease 2019: A multicenter study. Kidney Blood Press Res. 2020; 45 (4): 612–622. DOI: 10.1159/000509517.
- Esterbauer H, Schaur RJ, Zollner H. Chemistry and biochemistry of 4-hydroxynonenal, malonaldehyde and related aldehydes. Free Rad. Biol. Med. 1991; 11 (1): 81–128. DOI: 10.1016/0891-5849(91)90192-6.
- Guillamón E, Mut-Salud N, Rodríguez-Sojo MJ, Ruiz-Malagón AJ, Cuberos-Escobar A, Martínez-Férez A, Rodríguez-Nogales A, Gálvez J, Baños A. In vitro antitumor and anti-inflammatory activities of allium-derived compounds propyl propane thiosulfonate (PTSO) and propyl propane thiosulfinate (PTS). Nutrients. 2023; 15 (6): 1363. DOI: 10.3390/nu15061363.
- Gyurászová M, Gurecká R, Bábíčková J, Tóthová Ľ. Oxidative stress in the pathophysiology of kidney disease: Implications for noninvasive monitoring and identification of biomarkers. Med. Cell. Longev. 2020; 2020: 5478708. DOI: 10.1155/2020/5478708.
- Hallan SI, Rifkin DE, Potok OA, Katz R, Langlo KA, Bansal N, Ix JH. Implementing the European renal best practice guidelines suggests that prediction equations work well to differentiate risk of end-stage renal disease vs. death in older patients with low estimated glomerular filtration rate. Invest. 2019; 96 (3): 728–737. DOI: 10.1016/j.kint.2019.04.022.
- Ho HJ, Shirakawa H. Oxidative stress and mitochondrial dysfunction in chronic kidney disease. Cells. 2022; 12 (1): 88. DOI: 10.3390/cells12010088.
- Liubas N, Iskra R, Lubenets V. Antioxidant defense system of rat liver under the influence of thiosulfonate esters. Biol. 2023; 17 (2): 43–56. DOI: 10.30970/sbi.1702.709.
- Liubas N, Iskra R, Stadnytska N, Monka N, Havryliak V, Lubenets V. Antioxidant activity of thiosulfonate compounds in experiments in vitro and in vivo. Biointerface Res. Appl. Chem. 2022; 12 (3): 3106–3116. DOI: 10.33263/BRIAC123.31063116.
- Manna P, Jain SK. Obesity, oxidative stress, adipose tissue dysfunction, and the associated health risks: Causes and therapeutic strategies. Syndrome Rel. Disord. 2015; 13 (10): 423–444. DOI: 10.1089/met.2015.0095.
- Pal A, Mondal PP, Niloofar F, Sahoo B. Synthetic strategies for versatile thioester building blocks. J. Organ. Chem. 2022; 2022 (48): e202201159. DOI: 10.1002/ejoc.202201159.
- Pavlakou P, Liakopoulos V, Eleftheriadis T, Mitsis M, Dounousi E. Oxidative stress and acute kidney injury in critical illness: pathophysiologic mechanisms-biomarkers-interventions, and future perspectives. Med. Cell. Longev. 2017; 2017: 6193694. DOI: 10.1155/2017/6193694.
- Peng T, Zhuo L, Wang Y, Jun M, Li G, Wang L, Hong D. Systematic review of sodium thiosulfate in treating calciphylaxis in chronic kidney disease patients. Nephrology (Carlton). 2018; 23 (7): 669–675. DOI: 10.1111/nep.13081.
- Qiao J, Zheng K, Lin Z, Jin H, Yu W, Shen C, Jia A, Zhang Q. Heterogeneous Chitosan@copper catalyzed selective C(sp3)–H sulfonylation of ketone hydrazones with sodium sulfinates: Direct access to β-ketosulfones. Catalysts. 2023; 13 (4): 726. DOI: 10.3390/catal13040726.
- Ristow M, Schmeisser S. Extending life span by increasing oxidative stress. Free Rad. Biol. Med. 2011; 51 (2): 327–336. DOI: 10.1016/j.freeradbiomed.2011.05.010.
- Serra V, Castrica M, Agradi S, Curone G, Vigo D, Di Giancamillo A, Modina SC, Riva F, Balzaretti CM, De Bellis R, Brecchia G, Pastorelli Antioxidant activity of different tissues from rabbits fed dietary bovine colostrum supplementation. Animals. 2023; 13 (5): 850. DOI: 10.3390/ani13050850.
- Serra-Majem L, Román-Viñas B, Sanchez-Villegas A, Guasch-Ferré M, Corella D, La Vecchia C. Benefits of the Mediterranean diet: Epidemiological and molecular aspects. Aspect. Med. 2019; 67: 1–55. DOI: 10.1016/j.mam.2019.06.001.
- Shiwei Y, Zhaohua C, Qi C, Shuting L, Jinping H, Guanshen T, Zhaoyang W. Research progress in synthesis and application of thiosulfonates. J. Organ. Chem. 2022; 42 (8): 2322–2330. DOI: 10.6023/cjoc202203036.
- Stanisavljević N, Soković Bajić S, Jovanović Ž, Matić I, Tolinački M, Popović D, Popović N, Terzić-Vidojević A, Golić N, Beškoski V, Samardžić J. Antioxidant and antiproliferative activity of Allium ursinum and their associated microbiota during simulated in vitro digestion in the presence of food matrix. Microbiol. 2020; 11: 601616. DOI: 10.3389/fmicb.2020.601616.
- Sun M, Liu T, Li M, Tan J, Tian P, Wang H, Chen G, Jiang D, Liu X. A deep supercooling eutectic phase change material for low-temperature battery thermal management. Energy Stor. 2022; 50: 104240. DOI: 10.1016/j.est.2022.104240.
- Zhao Y, Zhang H, Hao D, Wang J, Zhang D, Sun Z, Liu C. Selenium alleviates chromium(VI)-induced ileum damage and cecal microbial disturbances in mice. Trace Elem. Res. 2022; 200: 4750–4761. DOI: 10.1007/s12011-021-03061-x.