Завантажити повний текст у PDF

Bìol. Tvarin. 2023; 25 (4): 11–16.
https://doi.org/10.15407/animbiol25.04.011
Received 10.08.2023 ▪ Revision 22.10.2023 ▪ Accepted 26.12.2023 ▪ Published online 29.12.2023

---

Додавання 1,3-диметилксантину покращило параметри якості сперми бугаїв

Аміт Кумар¹, Мінакші Вірмані¹, Раджеш Кумар¹, Сударшан Кумар¹, Сартак¹, Аруші Канвар¹, Сандіп Кумар², Ч. Патіл³

Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

¹Кафедра ветеринарної фізіології та біохімії, Коледж ветеринарних наук,
Університет ветеринарії та тваринництва імені Лали Ладжпат Рай (LUVAS), Гісар, Хар’яна, 125001, Індія

²Кафедра ветеринарної гінекології та акушерства, Коледж ветеринарних наук,
Університет ветеринарії та тваринництва імені Лали Ладжпат Рай (LUVAS), Гісар, Хар’яна, 125001, Індія

³Кафедра генетики та розведення тварин, Коледж ветеринарних наук,
Університет ветеринарії та тваринництва імені Лали Ладжпат Рай (LUVAS), Гісар, Хар’яна, 125001, Індія

---

Метилксантини є унікальним класом препаратів, отриманих з пуринової основи ксантину, а 1,3-диметилксантин (теофілін) є найчастіше використовуваним метилксантином. Метою цього дослідження було вивчити вплив додавання 1,3-диметилксантину до розріджувача на рухливість сперматозоїдів і морфологічні параметри сперми. Загалом було зібрано 15 еякулятів сперми від трьох дорослих бугаїв. Кожен еякулят розділили на п’ять груп. У першій, контрольній групі (C) зразки розбавляли гліцериновим розріджувачем Tris яєчного жовтка, а до зразків інших 4 груп (T-5, T-10, T-20 і T-40) додавали 1,3-диметилксантин у дозі 5, 10, 20 і 40 мМ відповідно. Розведені зразки сперми інкубували за 37°C на водяній бані та оцінювали різні параметри сперми через 15 і 30 хв. інкубації. Рухливість сперматозоїдів, кінетичні параметри сперми та аномалії сперматозоїдів сперми всіх груп оцінювали за допомогою комп’ютерного аналізатора сперми (CASA). Також оцінювали морфологічні показники сперматозоїдів контрольної та дослідних груп. Результати показали, що додавання 1,3-диметилксантину призвело до значного збільшення концентрації рухомих сперматозоїдів, кінематичних параметрів, життєздатності сперматозоїдів, сперматозоїдів з інтактною плазматичною мембраною порівняно з іншими групами. Однак аномалії сперматозоїдів — загнутий або згорнутий хвіст, дистальний краплинний і центральний рефлекс — не відрізнялися в усіх групах. Тому можна зробити висновок, що додавання 1,3-диметилксантину (теофіліну) у концентрації 10 мМ до розріджувача покращує якість сперми.

Ключові слова: 1,3-диметилксантин (теофілін), сперма, розріджувач сперми, рухливість, CASA

---

1. Abbas HS, Mossa HA, Al-Anbari LA, Selman MO, Al-Zahawi BA. A stimulatory approach for in vitro activation of human sperm motility by using theophylline. J. Adv. Res. 2018; 6 (4): 1128–1132. DOI: 10.21474/IJAR01/6961.
2. Vali A, Asilian A, Khoddami L, Shahtalebi M. Caffeine effect in treatment of psoriasis vulgaris. Seasonal J. Skin Dis. 2005; 181 (6): 465–462.
3. Anzar M, Farooq U, Mirza MA, Shahab M, Ahmad N. Factors affecting the efficiency of artificial insemination in cattle and buffalo in Punjab, Pakistan. Pakistan Vet. J. 2003; 23 (3): 106–113. Available at: http://www.pvj.com.pk/pdf-files/23_3/106-113.pdf
4. Bishist R, Raina VS, Bhakat M, Mohanty TK, Lone SA, Sinha R. Effect of antioxidant additives on freezability of buffalo spermatozoa. Buffalo Bull. 2020; 39 (3): 337–344. Available at: https://kuojs.lib.ku.ac.th/index.php/BufBu/article/view/908
5. Buffone MG, Wertheimer EV, Visconti PE, Krapf D. Central role of soluble adenylyl cyclase and cAMP in sperm physiology. Biophys. Acta. (BBA)-Mol. Basis Dis. 2014; 1842 (12): 2610–2620. DOI: 10.1016/j.bbadis.2014.07.013.
6. Homonnai ZT, Paz G, Sofer A, Kraicer PF, Harell A. Effect of caffeine on the motility, viability, oxygen consumption and glycolytic rate of ejaculated human normokinetic and hypokinetic spermatozoa. J. Fert. 1976; 21 (3): 162–170. PMID: 12119.
7. Hong CY, Chiang BN, Ku J, Wei YH, Fong JC. Calcium antagonists stimulate sperm motility in ejaculated human semen. British J. Clin. Pharmacol. 1985; 19 (1): 45–49. DOI: 10.1111/j.1365-2125.1985.tb02611.x.
8. Jewgenow K, Braun BC, Dehnhard M, Zahmel J, Goeritz F. Research on reproduction is essential for captive breeding of endangered carnivore species. Dom. Anim. 2017; 52 (S2): 18–23. DOI: 10.1111/rda.12836.
9. Kumar P, Kumar D, Sikka P, Singh P. Sericin supplementation improves semen freezability of buffalo bulls by minimizing oxidative stress during cryopreservation. Reprod. Sci. 2015; 152: 26–31. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2014.11.015.
10. Li P, Li ZH, Dzyuba B, Hulak M, Rodina M, Linhart O. Evaluating the impacts of osmotic and oxidative stress on common carp (Cyprinus carpio) sperm caused by cryopreservation techniques. Biol. Reprod. 2010; 83 (5): 852–858. DOI: 10.1095/biolreprod.110.085852.
11. Loughlin KR, Agarwal A. Use of theophylline to enhance sperm function. Androl. 1992; 28 (2): 99–103. DOI: 10.3109/01485019208987686.
12. De Fátima Lucio C, de Souza Ramos Angrimani D, Brito MM, Vannucchi CI. Oxidative stress challenges during the sperm cryopreservation in dogs. Vet. Androl. 2017; 2 (1). Available at: https://www.ivis.org/library/journal-of-veterinary-andrology/journal-of-veterinary-andrology-vol-21-jan-jun-2017/oxidative-stress-challenges-during-sperm-cryopreservation-dogs
13. Mason SJ. A retrospective clinical study of endoscopic-assisted transcervical insemination in the bitch with frozen-thawed dog semen. Dom. Anim. 2017; 52 (S2): 275–280. DOI: 10.1111/rda.12864.
14. Okada H, Tatsumi N, Kanzaki M, Fujisawa M, Arakawa S, Kamidono S. Formation of reaction oxygen species by spermatozoa from asthenozoospermic patients: response to treatment with pentoxifylline. Urol. 1997; 157 (6): 2140–2146. DOI: 10.1016/S0022-5347(01)64697-4.
15. Pankaj PK, Raina VS, Roy B, Mohanty TK, Mishra A. Effect of antioxidant preservative on cold protection ability of low grade riverine buffalo (Bubalus bubalis) bull spermatozoa. Australas. J. Anim. Sci. 2009; 22 (5): 626–635. DOI: 10.5713/ajas.2009.70267.
16. Prapaiwan N, Tharasanit T, Punjachaipornpol S, Yamtang D, Roongsitthichai A, Moonarmart W, Kaeoket K, Manee-In S. Low-density lipoprotein improves motility and plasma membrane integrity of cryopreserved canine epididymal spermatozoa. Australas. J. Anim. Sci. 2016; 29 (5): 646–651. DOI: 10.5713/ajas.15.0572.
17. Reddy NS, Mohanarao GJ, Atreja SK. Effects of adding taurine and trehalose to a tris-based egg yolk extender on buffalo (Bubalus bubalis) sperm quality following cryopreservation. Reprod. Sci. 2010; 119 (3–4): 183–190. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2010.01.012.
18. Shah N, Singh V, Yadav HP, Verma M, Chauhan DS, Saxena A, Yadav S, Swain DK. Effect of reduced glutathione supplementation in semen extender on tyrosine phosphorylation and apoptosis like changes in frozen thawed Hariana bull spermatozoa. Reprod. Sci. 2017; 182: 111–122. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2017.05.006.
19. Singh GV, Kumar A, Sachan V, Agrawal JK, Saxena A. Effect of the addition of insulin like growth factor-I (IGF-I) on cryopreservation of Hariana bull semen. J. Appl. Anim. Sci. 2020; 10 (4): 611–614. Available at: https://ijas.rasht.iau.ir/article_677970.html
20. Virmani M, Malik RK, Singh M, Patil CS, Singh P, Vijayalakshmy K. Enrichment of semen extender with Syzygium aromaticum extract: it’s impact on bull sperm preservation as an alternative to antibiotics. Sci. 2020; 9 (1): 63–68. Available at: https://www.anandpub.com/archive-june-volume-2020-9-13