РЕЗИСТЕНТНІСТЬ ОРГАНІЗМУ КРОЛЕМАТОК ТА ЖИТТЄЗДАТНІСТЬ КРОЛЕНЯТ ЗА УМОВ ТРИВАЛОГО ВИПОЮВАННЯ СУСПЕНЗІЇ ХЛОРЕЛИ, СУЛЬФАТУ НАТРІЮ, ХЛОРИДУ І ЦИТРАТУ ХРОМУ
Я. В. Лесик, Р. С. Федорук, І. І. Ковальчук, О. П. Долайчук
Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам необхідно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.
Інститут біології тварин НААН, вул. Стуса, 38, м. Львів, 79034
Досліджували вплив тривалого випоювання суспензії хлорели, сульфату натрію, хлориду і цитрату хрому на стан імунобіологічної та репродуктивної систем організму кролематок і життєздатність їхніх кроленят. Визначали вміст глікопротеїнів та окремих моноцукрів їхніх вуглеводних компонентів, концентрацію циркулюючих імунних комплексів, молекул середньої маси, фагоцитарну активність нейтрофілів, фагоцитарний індекс, фагоцитарне число, лізоцимну і бактерицидну активність крові кролиць, кількість і якість приплоду, збереженість кроленят. Дослідження проведені на самицях кролів, які отримані від матерів, що споживали разом з приплодом вищевказані добавки від народження і були розділені на п’ять груп, аналогічно схемі цьому досліду. Кролицям контрольної групи згодовували вволю збалансований гранульований комбікорм з вільним доступом до води. Самиці І дослідної групи до основного раціону з водою отримували 12,5–20 мл суспензії хлорели на кг маси тіла/добу. Тварини ІІ дослідної групи споживали корми раціону аналогічно І дослідній групі з введенням до води добавки сульфату натрію у кількості 37,5–42,5 мг S/кг маси тіла на добу. Кролематки ІІІ дослідної групи отримували раціон ІІ групи з додатковим випоюванням хлориду хрому в кількості 7–8,7 мкг Cr/кг маси тіла на добу. Кролицям ІV дослідної групи згодовували корми і випоювали воду аналогічно ІІ групі з уведенням до води цитрату хрому у кількості 2–3 мкг Cr/кг маси тіла на добу, отриманого методом з використанням нанотехнології. Дослідженнями встановлено, що у крові самок кролів ІІ, ІІІ і ІV дослідних груп, які додатково споживали в раціоні сульфат натрію, хлорид і цитрат хрому, вміст глікопротеїнів та окремих моноцукрів їхніх вуглеводних компонентів був вірогідно вищим на 20 добу лактації порівняно з контрольною групою. Уведення до раціону самок кролів ІІІ і ІV дослідних груп мінеральної та органічної сполук хрому зумовлювало високу імунобіологічну реактивність їхнього організму з підвищенням у крові рівня циркулюючих імунних комплексів, фагоцитарної активності нейтрофілів, лізоцимної і бактерицидної активності сироватки крові, порівняно з тваринами І і ІІ дослідної та контрольної груп. Застосування добавок Сірки і Хрому у раціоні кролематок позитивно вплинуло на їх репродуктивну функцію, що позначилося вищою молочністю самок за 20 діб лактації та більшою масою тіла і збереженістю кроленят на 20 і 40 доби життя порівняно з контролем.
Ключові слова: КРОЛІ, ХРОМ, СІРКА, ГЛІКОПРОТЕЇНИ, ФАГОЦИТАРНА, ЛІЗОЦИМНА І БАКТЕРИЦИДНА АКТИВНІСТЬ КРОВІ, РЕПРОДУКТИВНА ФУНКЦІЯ
- Klitsenko H. T., Kulyk M. F., Kosenko V., Lisovenko V. T. Mineral nutrition of animals. Kyiv, Svit Publ., 2001, p. 575. (in Ukrainian)
- Carlos de Blas, Julian Wiseman. Nutrition of the Rabbit. 2nd Edition. Library of Congress Cataloging-in-Publication Data, 2010, 325 p.
- Vincent J. B. The nutritional biochemistry of chromium (III). Department of Chemistry The University of Alabama Tuscaloosa USA, 2007, 279 p.
- Sedilo H. M., Makar I. A., Havrylyak V. V., Humenyuk V. V. Metabolic and productive action of sulfur in the body of sheep. Lviv, PAIS Publ, 2009, 148 p. (in Ukrainian)
- Sedilo H. M., Makar I. A., Havrylyak V. V., Humenyuk V. V. Metabolic and productive action of sulfur in the body of sheep. Lviv, PAIS Publ, 2009, 148 p. (in Ukrainian)
- Spears J. W. Micronutrients and immune function in cattle. Nutr., 2000, 59, pp. 1–8. https://doi.org/10.1017/S0029665100000835
- Rao S. V., Raju M. V., Panda A. K., Poonam N. S., Murthy O. K., Sunder G. S. Effect of dietary supplementation of organic chromium on performance, carcass traits, oxidative parameters, and immune responses in commercial broiler chickens. Biol. Trace. Elem. Res., 2012, 147 (1–3), pp. 135–141.
- Rhodes N. R., Le Blanc P. A., Rasco J. F., Vincent J. B. Monocarboxylate transporters are not responsible for Cr(3+) transport from endosomes. Biol. Trace. Elem. Res., 2012, 148 (3), pp. 409–414. https://doi.org/10.1007/s12011-012-9381-1
- Uyanik F. The effects of dietary chromium supplementation on some blood parameters in sheep. Biol. Trace. Elem. Res., 2001, 84, pp. 93–101. https://doi.org/10.1385/BTER:84:1-3:093
- Padmavathi I. J., Rao K. R., Venu L., Ganeshan M., Kumar K. A., Rao Ch. N., Harishankar N., Ismail A., Raghunath M. Chronic maternal dietary chromium restriction modulates visceral adiposity: probable underlying mechanisms. Diabetes., 2010, 59 (1), pp. 98–104. https://doi.org/10.2337/db09-0779
- Wang M. Q., Wang C., Li H., Du Y. J., Tao W. J., Ye S. S., He Y. D. Effects of chromium-loaded chitosan nanoparticles on growth, blood metabolites, immune traits and tissue chromium in finishing pigs. Biol. Trace. Elem. Res., 2012, 149 (2), pp. 197–203. https://doi.org/10.1007/s12011-012-9428-3
- Staniek H., Krejpcio Z., Iwanik K., Szymusiak H., Wieczorek D. Evaluation of the Acute Oral Toxicity Class of Trinuclear Chromium(III) Glycinate Complex in Rat. Biol. Trace. Elem. Res., 2011, 143 (3), pp. 1564–1575. https://doi.org/10.1007/s12011-011-8959-3
- Huntoon K., Wang Y., Epplito Ch. The acute phase protein haptoglobin regulates host immunity. J. Leukocyte Biol., 2008, 84, pp. 170–181. https://doi.org/10.1189/jlb.0208100
- Naito Y. Activation-dependent change in sialic acid species in mouse B cells. Trends in Glycoscience and Glycotechnology, 2009, 21 (120), pp. 237–246. https://doi.org/10.4052/tigg.21.237
- Lowe J. B. Glycosylation, immunity and autoimmunity. Cell, 2001, 104, pp. 809–812. https://doi.org/10.1016/S0092-8674(01)00277-X
- Kosinov M. V., Kaplunenko V. H. Method of metal carboxylates “Nanotechnology get metal carboxylates”. Patent U. 38391, 2009. (in Ukrainian)
- Vlizlo V. V., Fedoruk R. S., Ratych I. B. Laboratory methods for research in biology, veterinary medicine. A handbook. Lviv, 2012. 764 p. (in Ukrainian)
- Arredouani M., Matthijs P., Hoeyveld V., Kasran A., Baumann H., Ceuppens J. L. Haptoglobin directly affects cells and suppresses T helper cell type 2 cytokine release. Immunology, 2003, 108, pp. 144–151. https://doi.org/10.1046/j.1365-2567.2003.01569.x
- Jeneway C. A. The T cell receptor as a multicomponent signaling machine: CD4/CD8 coreceptors and CD45 in cell activation. Annu. Rev. Immunol., 1992, 10, pp. 645–674. https://doi.org/10.1146/annurev.iy.10.040192.003241
- Arredouani M., Matthijs P., Hoeyveld V., Kasran A., Baumann H., Ceuppens J. L. Haptoglobin directly affects cells and suppresses T helper cell type 2 cytokine release. Immunology, 2003, 108, pp. 144–151. https://doi.org/10.1046/j.1365-2567.2003.01569.x
- Arredouani M., Kasran A., Vanoirbeek J. A., Berger F. G., Baumann H., Ceuppens J. L. Haptoglobin dampens endotoxininduced inflammatory effects both in vitro and in vivo. Immunology, 2005, 114, pp. 263–271. https://doi.org/10.1111/j.1365-2567.2004.02071.x
- Varki A., Gaaneux P. Multifarious roles of sialic acids in immunity. Ann. N.Y. Acad. Sci., 2012, 1253, pp. 16–36. https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.2012.06517.x
- Park D., Ryu K. S., Choi D. Characterization and role of fucose mutarotase in mammalian cells. Glycobiology, 2007, 17 (9), pp. 955–962. https://doi.org/10.1093/glycob/cwm066
- Adory D., Rhodes N. R., Briggins F., Bailey M. M., Di Bona K. R., Goodwin C., Vincent J. B., Rasco J. F. Potential of chromium(III) picolinate for reproductive or developmental toxicity following exposure of male CD-1 mice prior to mating. Biol. Trace. Elem. Res., 2011, 143, (3), pp. 1666–1672. https://doi.org/10.1007/s12011-011-9002-4
- Rhodes N. R., Le Blanc P. A., Rasco J. F., Vincent J. B. Monocarboxylate transporters are not responsible for Cr(3+) transport from endosomes. Biol. Trace. Elem. Res., 2012, 148 (3), pp. 409–414. https://doi.org/10.1007/s12011-012-9381-1